临床样本及小鼠模型HA表达与免疫细胞分布分析
观察HA在人类GBM和小鼠模型中的表达,以及HA与免疫细胞浸润的关系。
通过免疫组化染色检测人脑和GBM组织中的HA,双重染色HA与CD3、CD4、CD8、CD68,分析免疫细胞分布。在005 GBM小鼠模型中,通过IHC和NanoString分析免疫特征。
Modification of Extracellular Matrix Enhances Oncolytic Adenovirus Immunotherapy in Glioblastoma
包含体外细胞活力测定、BMDM NF-kB信号检测、原位小鼠模型生存分析、免疫细胞耗竭实验、流式细胞术及NanoString转录组分析等多个独立证据层级,并进行功能验证与机制验证。
小鼠005胶质母细胞瘤干细胞原位移植模型 患者胶质母细胞瘤组织样本 小鼠GL261胶质瘤细胞系 小鼠CT-2A胶质瘤细胞系
病毒注射剂量:ICOVIR15和ICOVIR17为1.6×10^7 PFU/只;联合治疗中第二次注射为1.0×10^7 PFU/只 抗PD-1抗体(克隆RMP1-14)剂量为12.5 mg/kg,腹腔注射 免疫耗竭抗体剂量:抗CD8a和抗CD4均为10 mg/kg 氯膦酸盐脂质体首次注射50 mg/kg,后续25 mg/kg BMDM实验中HMW-HA和LMW-HA浓度为2000 μg/ml
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
观察HA在人类GBM和小鼠模型中的表达,以及HA与免疫细胞浸润的关系。
通过免疫组化染色检测人脑和GBM组织中的HA,双重染色HA与CD3、CD4、CD8、CD68,分析免疫细胞分布。在005 GBM小鼠模型中,通过IHC和NanoString分析免疫特征。
评估ICOVIR15和ICOVIR17对人和小鼠胶质瘤细胞的杀伤效果和病毒复制能力。
用不同MOI的感染细胞,通过CellTiter-Glo检测细胞活力;检测PH20表达和病毒复制。
评估ICOVIR15和ICOVIR17对原位005 GBM小鼠的生存期影响和HA降解能力。
立体定向植入005 GSC,第11和17天瘤内注射病毒或PBS,记录生存期;处理后取脑组织进行IHC分析HA和E1A表达。
验证不同分子量HA对腺病毒诱导的巨噬细胞NF-kB活化的影响。
BMDM与LMW-HA或HMW-HA共培养后,用LPS或ICOVIR15刺激,通过p65核转位和iNOS/TNF表达评估NF-kB信号。
评估ICOVIR17与抗PD-1联合治疗对原位005 GBM小鼠生存期的影响。
小鼠植入005 GSC后,瘤内注射ICOVIR17和腹腔注射抗PD-1抗体或对照IgG,记录生存期;部分实验进行NanoString转录组分析。
确定CD4+、CD8+ T细胞和巨噬细胞对联合治疗效果的贡献。
使用抗CD4、抗CD8抗体或氯膦酸盐脂质体耗竭相应免疫细胞,然后进行联合治疗,比较生存期。
评估治疗后肿瘤浸润T细胞和巨噬细胞的表型变化。
收集肿瘤和脾脏,进行多色流式细胞术检测CD4、CD8、Treg、PD-1、TIM3、CTLA4、巨噬细胞标志物(CD11b、F4/80、iNOS、TNF、Arg1)等。
评估联合治疗诱导的T细胞对肿瘤细胞的杀伤特异性和功能。
从脾脏和肿瘤中分离T细胞,与005-Fluc或B16.F10-Fluc靶细胞共培养,通过荧光素酶检测细胞活力;同时检测细胞内Granzyme B和IFNγ。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | Neurobasal培养基 | Invitrogen | -- |
| B27补充剂 | Invitrogen | -- | |
| N2补充剂 | Invitrogen | -- | |
| 肝素 | Sigma | -- | |
| 表皮生长因子 | R and D systems | -- | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | Peprotec | -- | |
| Accutase | Innovative Cell Technologies | -- | |
| 动物实验 | C57BL/6小鼠 | Charles River Laboratories | -- |
| 组织染色 | 曙红Y | Fisher Scientific | 7231 |
| Cytoseal XYL封片剂 | ThermoFisher Scientific | 8312-16E | |
| 免疫组化 | BLOXALL封闭液 | Vector | SP-6000 |
| 正常马血清 | Vector | S-2012 | |
| DAB底物 | DAKO | K3468 | |
| HA染色 | 生物素化HA结合蛋白 | Calbiochem | 385911 |
| 牛睾丸透明质酸酶 | Sigma | H3506 | |
| VECTASTAIN Elite ABC HRP试剂盒 | Vector | PK-6100 | |
| 双重染色 | VECTASTAIN ABC-AP试剂盒 | Vector | AK-5000 |
| ImmPACT红色AP底物 | Vector | SK-5105 | |
| 细胞活力测定 | CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂 | Promega | G7570 |
| RT-PCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| High Capacity cDNA反转录试剂盒 | Applied Biosystems | 4368814 | |
| SYBR select预混液 | Applied Biosystems | 4472908 | |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| BMDM培养 | 低分子量透明质酸 | R and D systems | GLR-001 |
| 高分子量透明质酸 | R and D systems | GLR-002 | |
| BMDM刺激 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L4391 |
| 基因表达分析 | RNeasy小型提取试剂盒 | Qiagen | 74104 |
| NanoString小鼠泛癌免疫面板 | NanoString Technologies | 115000142 | |
| NanoString小鼠髓样先天免疫面板 | NanoString Technologies | 115000181 | |
| nCounter Max分析系统 | NanoString Technologies | -- | |
| 免疫耗竭 | 抗小鼠CD8a抗体 | BioXcell | BE0061 |
| 抗小鼠CD4抗体 | BioXcell | BE0003-1 | |
| 空脂质体 | Encapsula Nano Sciences | CLD8910 | |
| 流式细胞术 | Zombie UV™可固定活力试剂盒 | BioLegend | 423108 |
| Fc受体封闭试剂 | Miltenyi Biotec | 130-092-575 | |
| FOXP3固定/破膜缓冲液套装 | BioLegend | 421403 | |
| BD Cytofix/Cytoperm™固定/破膜试剂盒 | BD | 554714 | |
| LSR II流式细胞仪 | BD | -- | |
| FlowJo软件 | Tree Star | -- | |
| T细胞分离 | 碎片去除液 | Miltenyi Biotec | 130-109-398 |
| 小鼠CD4/CD8(TIL)磁性微珠 | Miltenyi Biotec | 130-116-480 | |
| MiniMACS分离器 | Miltenyi Biotec | 130-042-102 | |
| MS分离柱 | Miltenyi Biotec | 130-042-201 | |
| T细胞杀伤实验 | D-荧光素 | -- | -- |
| 脾细胞处理 | 小鼠红细胞裂解缓冲液 | Boston BioProducts | IBB-198 |
| 脾细胞刺激 | 白细胞介素-2 | -- | -- |
| 布雷菲德菌素A (高尔基体阻断剂) | BD Biosciences | -- | |
| 统计分析 | Prism 8软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 病毒制备与滴定 | 病毒扩增细胞系(A549),CsCl超速离心纯化方法 阅读提示:Materials and Methods, Viruses段落 |
| 细胞培养 | 005 GSC培养基成分(Neurobasal, B27, N2, 肝素, EGF, FGF),传代使用Accutase 阅读提示:Materials and Methods, Cell lines段落 |
| 原位小鼠模型建立 | 005 GSC植入数量(1.0×10^5或1.2×10^5细胞/只),植入坐标(右侧纹状体) 阅读提示:Materials and Methods, In vivo mouse studies段落 |
| 病毒治疗 | 病毒注射剂量(1.6×10^7 PFU/只)和注射次数(第11和17天;或第9和14天) 阅读提示:Materials and Methods, In vivo mouse studies段和Figure 2A、Figure 4A |
| 联合治疗 | 抗PD-1抗体给药方案(12.5 mg/kg,腹腔注射,第10、13、16、19天) 阅读提示:Materials and Methods, Gene expression analysis段落和Figure 4A |
| 免疫细胞耗竭 | 抗CD4/抗CD8剂量(10 mg/kg)和注射时间(第5、8、11、14、21、27天);氯膦酸盐脂质体剂量(首针50 mg/kg,后25 mg/kg)及时间(第8、11、14、17天) 阅读提示:Materials and Methods, Immune cell depletion studies段落和Figure 4F |
| BMDM实验 | BMDM培养条件和时间(L929条件培养基),LMW-HA和HMW-HA浓度2000 μg/ml,刺激条件(LPS 100 pg/ml 1小时;ICOVIR15 MOI=50 6小时) 阅读提示:Materials and Methods, BMDM和NF-kB signaling activation in BMDM段落 |
| 流式细胞术 | 抗体克隆和荧光标记(见补充表S1),活/死染色(Zombie UV™),胞内染色(FOXP3和细胞因子) 阅读提示:Materials and Methods, Multicolor flow cytometry (FCM)段落和补充表S1 |
| T细胞杀伤实验 | 效靶比(2:1, 10:1, 50:1),共培养时间(24小时),靶细胞(005-Fluc和B16.F10-Fluc) 阅读提示:Materials and Methods, T cell isolation and cytotoxicity assay段落 |