分析CCR4在Tregs上的表达
评估同时靶向HER2和CCR4的可行性,以及CCR4作为选择性消除Tregs靶点的潜力。
通过流式细胞术分析健康小鼠和荷瘤小鼠外周血及肿瘤浸润淋巴细胞中Tregs(CD3+CD4+CD25+CD127-)的CCR4表达情况,比较Tregs与CD8+ T细胞和传统T细胞(Tconv)中CCR4+细胞的比例。
Anti-HER2×CCR4 bispecific antibody enhances antitumor immunity in advanced HER2-positive tumors by chemotaxis blockade and depletion of tumor-associated Tregs, without inducing systemic toxicity
包括体外抗体构建与功能验证、体外ADCC与趋化实验、两种人源化免疫系统小鼠模型(胃癌和乳腺癌)的体内药效与安全性评估、联合用药和PK分析等至少两个独立证据层级,并包含功能验证和机制验证。
HER2阳性胃癌细胞系NCI-N87皮下移植瘤模型 乳腺癌细胞系MDA-MB-231-HER2-Luc原位移植瘤模型 人免疫系统重建的NOG小鼠(HSC或PBMC来源) 体外共培养系统(肿瘤细胞、Treg-CCR4、PBMC等)
XL-11的剂量(1、3、10 mg/kg)及给药途径(腹腔注射)和频率(每6天一次) 动物模型中NK细胞的扩增方案(IL-2和IL-15的剂量和频率) 肿瘤细胞接种数量及Matrigel混合比例 外周血和肿瘤组织中Tregs(CD3+CD4+CD25+CD127-)及CCR4表达的分析方法 PK分析中XL-11的给药剂量(10 mg/kg)和采血时间点
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估同时靶向HER2和CCR4的可行性,以及CCR4作为选择性消除Tregs靶点的潜力。
通过流式细胞术分析健康小鼠和荷瘤小鼠外周血及肿瘤浸润淋巴细胞中Tregs(CD3+CD4+CD25+CD127-)的CCR4表达情况,比较Tregs与CD8+ T细胞和传统T细胞(Tconv)中CCR4+细胞的比例。
生成具有不同CCR4结合亲和力的双特异性抗体,并验证其结构、抗原结合特性以及HER2优先结合能力。
使用trastuzumab和mogamulizumab的可变区构建DVD-Ig,通过不同长度的linker连接,获得XL-11, XL-12, XL-21, XL-22。利用SPR和ELISA测定与HER2和CCR4的亲和力;通过竞争ELISA评估其阻断CCL22-CCR4结合的能力;利用流式细胞术检测抗体与不同HER2表达水平细胞系的结合能力。
验证候选抗体在体外是否能有效杀伤肿瘤细胞和Tregs、阻断Treg趋化,以及恢复效应T细胞功能。
通过ADCC实验评估抗体对SKBR3和NCI-N87肿瘤细胞及Treg-CCR4细胞的细胞毒性;使用趋化小室实验评估抗体对CCL22诱导的Treg-CCR4趋化的抑制作用;通过共培养实验评估抗体逆转Treg介导的效应T细胞增殖抑制及细胞因子分泌降低的能力。
在免疫系统人源化小鼠模型中评估XL-11的抗肿瘤效果及其对肿瘤微环境中Tregs和CD8+ T细胞的影响。
建立HSC-NOG和PBMC-NOG小鼠模型,并利用IL-2和IL-15扩增NK细胞。皮下接种NCI-N87胃癌细胞或原位注射MDA-MB-231-HER2-Luc乳腺癌细胞。肿瘤体积达到约100 mm³后开始给予XL-11或其他对照抗体(腹腔注射,每6天一次)。记录肿瘤体积和体重,并通过流式细胞术分析肿瘤浸润淋巴细胞和外周血中Tregs、CD8+ T细胞的比例,通过活体成像评估乳腺癌转移情况。
评估XL-11在不同剂量下的抗肿瘤疗效和潜在系统性毒性。
在PBMC-NOG小鼠中建立NCI-N87肿瘤模型,并给予不同剂量(1, 3, 10 mg/kg)的XL-11,检测肿瘤生长、肿瘤内Tregs比例、外周血中Tregs比例、器官损伤情况以及记忆T细胞比例。
评估XL-11与PD-1/L1阻断剂的协同抗肿瘤作用,并评估其热稳定性和药代动力学特性。
在PBMC-NOG小鼠模型中,联合给予XL-11和PD-1或PD-L1抗体,评估肿瘤生长和CD8+ T细胞浸润情况。通过热稳定性实验测定XL-11的Tm值,并通过静脉注射10 mg/kg XL-11后在不同时间点采集血清,绘制浓度-时间曲线,计算PK参数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 抗体生成 | pAb2c0-hCK载体 | -- | -- |
| pAb20-hCHIgG1载体 | Synbio Technologies | -- | |
| 聚乙烯亚胺 | TransGen Biotech | FT401-01 | |
| SMM 293-TII培养基 | Sino Biological | M293TII | |
| 抗体纯化 | rProtein A琼脂糖重力柱 | Smart-Lifescience | SA012GC01 |
| ELISA | HER2蛋白 | ACRO Biosystems | HE2-H5225 |
| CCR4蛋白 | CUSABIO | CSB-CF004843HU | |
| 山羊抗人IgG-HRP | Beijing Solarbio Science & Technology | SE101 | |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞结合实验 | 山羊抗人IgG-Fc/FITC | Beijing Solarbio Science & Technology | SF105 |
| BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD | -- | |
| Treg诱导 | 人Treg稳健扩增试剂盒 | Stemery Biotech | CT-011 |
| 共结合实验 | 羧基荧光素琥珀酰亚胺酯 | Solarbio Science & Technology | S1076 |
| PKH26细胞标记试剂盒 | Solarbio Science & Technology | D0030 | |
| 共聚焦显微镜 | LSM 800共聚焦显微镜(带Airyscan) | Zeiss | -- |
| ADCC实验 | LDH细胞毒性检测试剂盒 | Abbkine | KTA1030 |
| 趋化实验 | 重组CCL22 | -- | -- |
| 细胞因子检测 | IFN-γ ELISA试剂盒 | Shanghai Jianglai Biotechnology | JL12152 |
| IL-2 ELISA试剂盒 | Shanghai Jianglai Biotechnology | JL19265-5 | |
| 稳转细胞系建立 | pCDH-CMV-MCS-EF1-Puro载体 | -- | -- |
| 动物实验 | 人白细胞介素-2 | Sihuan Bioengineering | -- |
| 人白细胞介素-15 | Stemery Biotec | -- | |
| 基质胶 | Mogengel Bio | 082724 | |
| 抗PD-1抗体 | TargetMol | T9908 | |
| 抗PD-L1抗体 | TargetMol | T9902 | |
| 流式分析 | 红细胞裂解液 | Elabscience Biotechnology | E-CK-A105 |
| DNA内切酶 | Solarbio | -- | |
| 胰蛋白酶 | Solarbio | -- | |
| 胶原酶 | Solarbio | -- | |
| 荧光染料 | Elabscience | -- | |
| 活体成像 | D-荧光素钾盐 | Beijing Solarbio Science & Technology | IL2330 |
| IVIS Spectrum小动物活体成像系统 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 抗体构建及稳定性分析 | 构建载体及linker序列;热稳定性实验中抗体处理温度和时间;ELISA中抗原包被浓度 阅读提示:Methods: Generation and stability analysis of BsAbs |
| 体外ADCC实验 | 效应细胞与靶细胞比例(25:1);孵育时间(3小时);靶细胞类型(SKBR3, NCI-N87, Treg-CCR4);抗体浓度(文中未明确说明) 阅读提示:Methods: Antibody-dependent cellular cytotoxicity assay |
| 趋化实验 | 趋化小室孔径(5µm);下室趋化因子浓度(重组CCL22);孵育时间(4小时);细胞数量(文中未明确说明) 阅读提示:Methods: Chemotaxis assay |
| Treg抑制实验 | Treg与Teff比例(1:4);共培养时间(48小时);抗体浓度(文中未明确说明) 阅读提示:Methods: Regulatory T-cell suppression assay |
| 动物模型建立 | NOG小鼠周龄(6-8周)及雌性;辐射剂量(1.5 Gy);HSC细胞数量(5×10^4)或PBMC细胞数量(5×10^6);IL-2给药剂量和频率(5μg/天×7天);IL-15给药剂量和频率(2.5μg每5天,共3次);肿瘤细胞株及接种数量和方式 阅读提示:Methods: Construction of tumor models and human immune system in vivo |
| 体内治疗 | 给药途径(腹腔注射);给药频率(每6天一次);起始治疗时间(肿瘤体积约100 mm³);XL-11剂量(1, 3, 10 mg/kg);对照组处理(文中未明确说明) 阅读提示:Methods: Construction of tumor models and human immune system in vivo; Results: XL-11 has good clinical translational potential |
| PK分析 | 给药剂量(10 mg/kg)和途径(尾静脉注射);采血时间点(5min到504小时);小鼠品系(C57BL/6J)及周龄(8周) 阅读提示:Methods: PK analyses |