检测S100A8/A9在SjDED患者和小鼠中的表达
明确S100A8/A9在SjDED中的表达变化及其与疾病严重程度的关系。
通过qRT-PCR和Western blot检测SjDED患者PBMCs和不同周龄NOD小鼠泪腺中S100A8和S100A9的表达,并分析其与临床指标(OSDI评分、泪液分泌)和炎症浸润的相关性。
S100A8/A9 Promotes Dendritic Cell-Mediated Th17 Cell Response in Sjögren's Dry Eye Disease by Regulating the Acod1/STAT3 Pathway
包含患者样本表达检测、NOD小鼠体内干预、体外细胞共培养及信号通路机制验证等多层级实验。
NOD小鼠SjDED模型 BALB/c小鼠(健康对照) NOD小鼠来源的CD4+T细胞和BMDCs 患者PBMCs
SjDED模型:雌性NOD/ShiLtJ小鼠,4-24周龄,16周时疾病完全建立 paquinimod剂量:25 mg/kg,腹腔注射,隔日一次,持续28天 colivelin剂量:2 mg/kg,于paquinimod给药后第14天和第21天给予 S100A8/A9重组蛋白浓度:4 μg/mL,处理BMDCs 24小时 Th17极化条件:anti-CD3/anti-CD28(5 μg/mL),anti-IL-4(10 μg/mL),anti-IFN-γ(10 μg/mL),TGF-β(5 ng/mL),IL-6(40 ng/mL),IL-23(20 ng/mL)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确S100A8/A9在SjDED中的表达变化及其与疾病严重程度的关系。
通过qRT-PCR和Western blot检测SjDED患者PBMCs和不同周龄NOD小鼠泪腺中S100A8和S100A9的表达,并分析其与临床指标(OSDI评分、泪液分泌)和炎症浸润的相关性。
验证抑制S100A8/A9是否能缓解SjDED小鼠的疾病表现。
对16周龄NOD小鼠腹腔注射paquinimod(25 mg/kg)或溶剂,隔日一次,持续28天。期间评估角膜荧光素染色评分、泪液分泌量;实验结束后取泪腺、脾脏和淋巴结进行组织学和免疫细胞分析。
确定S100A8/A9是否直接影响CD4+T细胞的Th17分化。
从NOD小鼠脾脏和淋巴结分离CD4+T细胞,在Th17极化条件下用重组S100A8/A9蛋白或溶剂处理,3天后检测Th17细胞比例和IL-17分泌。
确认S100A8/A9是否通过作用于DC来影响Th17细胞反应。
用重组S100A8/A9蛋白或溶剂处理BMDCs 24小时,洗涤后与CD4+T细胞共培养(1:20)在Th17极化条件下,检测Th17细胞比例、IL-17分泌、Th17相关基因表达及T细胞增殖。
识别S100A8/A9影响DC功能的关键分子和信号通路。
对S100A8/A9处理或溶剂处理的BMDCs进行RNA-seq分析,筛选差异表达基因,并进行qRT-PCR验证。进一步通过siRNA敲低Acod1,检测DC中促炎因子表达和STAT3/JAK2磷酸化水平。
确定STAT3信号是否介导S100A8/A9对DC功能及Th17反应的促进作用。
使用STAT3抑制剂Stattic预处理的DC在S100A8/A9刺激后与CD4+T细胞共培养,评估Th17反应;并检测DC中Il23a、MHC II表达变化。同时通过ChIP实验检测p-STAT3与Il23a启动子的结合。
验证STAT3活化是否能逆转paquinimod对SjDED的治疗效果,确认STAT3在通路中的关键作用。
NOD小鼠分组:paquinimod+colivelin组、paquinimod组、对照组。按方案给药后评估角膜荧光素染色、泪液分泌、泪腺炎症及脾脏和淋巴结中DC和Th17细胞比例。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 帕喹莫德 | TargetMol Chemicals | T7310 |
| Colivelin | Santa Cruz Biotechnology | sc-361153 | |
| 细胞培养 | 重组小鼠S100A8/A9 | R&D Systems | 8916-S8 |
| 重组小鼠TGF-β | R&D Systems | 7666-MB | |
| 重组小鼠IL-6 | R&D Systems | 406-ML | |
| 重组小鼠IL-23 | R&D Systems | 1887-ML | |
| 重组小鼠IL-4 | R&D Systems | 404-ML | |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | R&D Systems | 415-ML | |
| 抗小鼠CD3抗体 | eBioscience | 16-0031-86 | |
| 抗小鼠CD28抗体 | eBioscience | 16-0281-86 | |
| 抗IL-4中和抗体 | eBioscience | 16-7041-85 | |
| 抗IFN-γ中和抗体 | eBioscience | 16-7312-85 | |
| 共培养 | 抗IL-23 p19中和抗体 | eBioscience | 14-7232-85 |
| 细胞分离 | Ficoll梯度离心 | -- | -- |
| PE抗小鼠CD4抗体 | -- | -- | |
| 抗PE微珠 | Miltenyi Biotec | 130-048-801 | |
| MACS分离器 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 细胞培养 | 二甲基亚砜 | Solarbio | -- |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| CFSE染色 | 羧基荧光素琥珀酰亚胺酯 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RNA-seq | SuperScript II逆转录酶 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Agilent 4200 TapeStation系统 | Agilent Technologies | -- | |
| Illumina测序平台 | Illumina | -- | |
| ELISA | 小鼠IL-17 DuoSet ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY421 |
| 底物试剂盒 | R&D Systems | DY999 | |
| Spark 10 M发光检测仪 | Tecan | -- | |
| 流式细胞术 | Fc阻断抗体 | BioLegend | 156604 |
| 佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 离子霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 布雷菲德菌素A | Sigma-Aldrich | -- | |
| eBioscience胞内固定和透化缓冲液套装 | eBioscience | -- | |
| FACS Calibur流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| qRT-PCR | EZ-press RNA纯化试剂盒 | EZBioscience | -- |
| RevertAid第一链cDNA合成试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| FastStart Universal SYBR Green Master | Roche | 04913914001 | |
| LightCycler 480实时荧光定量PCR系统 | Roche | -- | |
| 蛋白提取 | RIPA裂解缓冲液 | Beyotime | -- |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | -- |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| ECL发光液 | Cytiva | -- | |
| 4800化学发光成像系统 | Tanon | -- | |
| 免疫荧光 | 磷酸盐缓冲液吐温 | Solarbio | P1031 |
| 山羊血清 | Solarbio | SL038 | |
| 抗p-STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9145 | |
| 山羊抗兔IgG H&L (Alexa Fluor 647) | Abcam | ab150079 | |
| 4',6-二脒基-2-苯基吲哚 | Sigma-Aldrich | -- | |
| LSM 800共聚焦显微镜 | ZEISS | -- | |
| ChIP | 染色质免疫沉淀试剂盒 | Abcam | ab500 |
| 蛋白A琼脂糖珠 | -- | -- | |
| 组织学分析 | MICRON IV生物显微镜 | Phoenix Research Labs | -- |
| BX51荧光显微镜 | Olympus Corporation | -- | |
| ImageJ软件 | National Institutes of Health | -- | |
| 统计分析 | Prism 8 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者样本采集 | 患者诊断标准(TFOS DEWS II和2016 ACR/EULAR标准)、样本量(非SjDED n=7,SjDED n=8)、性别、年龄 阅读提示:Methods: Patients |
| 动物模型建立 | 小鼠品系(NOD/ShiLtJ)、年龄(4-24周)、饲养条件(SPF)、性别匹配 阅读提示:Methods: Mice |
| 药物处理 | paquinimod剂量(25 mg/kg)、给药方式(腹腔注射)、给药频率(隔日一次)、持续时间(28天) 阅读提示:Methods: Administration of S100A8/A9 Inhibitor |
| 细胞培养 | BMDC诱导条件(GM-CSF和IL-4浓度)、处理时间(24小时)、S100A8/A9浓度(4 μg/mL) 阅读提示:Methods: Generation and Transfection of Bone Marrow–Derived DCs |
| Th17极化 | 细胞因子浓度(TGF-β 5 ng/mL, IL-6 40 ng/mL, IL-23 20 ng/mL)、中和抗体浓度(anti-IL-4, anti-IFN-γ 10 μg/mL)、共培养比例(1:20) 阅读提示:Methods: CD4+T Cell Isolation and Polarization; Co-Culture of CD4+T Cells and DCs |
| 信号通路验证 | STAT3抑制剂Stattic浓度、处理时间(1小时)、siRNA序列、转染时间(24小时) 阅读提示:Methods: Generation and Transfection of Bone Marrow–Derived DCs; Figure 7 legend |