角膜去神经模型的建立
通过手术、药理学和遗传学方法损伤角膜感觉神经,验证其对泪液分泌的影响。
构建了手术轴索切断、辣椒素或RTX局部应用、Trpv1-Cre/DTR小鼠注射白喉毒素等角膜去神经模型,并检测角膜敏感性、神经密度和泪液分泌。
CGRP Released by Corneal Sensory Nerve Maintains Tear Secretion of the Lacrimal Gland
涉及多种动物模型(手术、药物、转基因小鼠)、功能验证(泪液分泌、角膜敏感性)、机制验证(SSN激活、细胞增殖)及转录组分析。
C57BL/6J小鼠手术角膜去神经模型 C57BL/6J小鼠辣椒素角膜去神经模型 C57BL/6J小鼠RTX角膜去神经模型 Trpv1-Cre/DTR小鼠TRPV1神经元消融模型
手术去神经模型:通过挤压睫状神经45秒实现;角膜敏感性和泪液分泌测量(n=6/组) 辣椒素处理:浓度为3 µg/µL,局部应用;泪液分泌在1天时降至2.5±0.5 mm,7天恢复 RTX处理:浓度为0.5 µg/µL,局部应用;泪液分泌降至2.7±0.8 mm Trpv1-Cre/DTR小鼠:DT注射8 µg/kg,隔天注射持续3周;泪液分泌降至1.8±0.5 mm CGRP给药:结膜下注射10.5 µM,处理24小时及即刻;泪液分泌从2.6±0.5 mm增加至4.5±0.5 mm BIBN-4096处理:结膜下注射2 µg/µL,连续3天;泪液分泌降至3.4±0.5 mm
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过手术、药理学和遗传学方法损伤角膜感觉神经,验证其对泪液分泌的影响。
构建了手术轴索切断、辣椒素或RTX局部应用、Trpv1-Cre/DTR小鼠注射白喉毒素等角膜去神经模型,并检测角膜敏感性、神经密度和泪液分泌。
检测角膜去神经后CGRP和SP水平的变化。
在辣椒素处理后24小时收集角膜,通过ELISA检测CGRP和SP水平。
验证CGRP或SP是否能够恢复角膜去神经小鼠的泪液分泌。
在辣椒素或RTX处理的小鼠结膜下注射CGRP或SP,检测泪液分泌变化;在正常小鼠中给予CGRP受体拮抗剂BIBN-4096,检测泪液分泌变化。
验证CGRP是否通过激活SSN副交感神经元来调节泪液分泌。
对辣椒素处理并给予CGRP的小鼠进行脑组织免疫染色,检测c-FOS与ChAT共表达情况。
鉴定泪腺中受角膜去神经和CGRP调控的关键信号通路及细胞类型。
对对照、辣椒素处理、辣椒素+CGRP组小鼠的泪腺进行RNA-seq,分析差异表达基因和通路;用qPCR、Western blot和免疫荧光验证细胞增殖相关基因及腺泡细胞增殖。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 手术去神经模型 | 利多卡因 | -- | -- |
| 角膜敏感性测量 | Cochet-Bonnet角膜知觉测量计 | Luneau Ophtalmologie | -- |
| 泪液分泌测量 | 酚红棉线 | Jingming | #30059010 |
| 药理学去神经 | 辣椒素 | Selleckchem | -- |
| 树脂毒素 | Sigma | -- | |
| CGRP给药 | 降钙素基因相关肽 | Phoenix Pharmaceuticals | -- |
| SP给药 | P物质 | Med Chem Express | -- |
| TRPV1神经元消融 | 白喉毒素 | Sigma | -- |
| 拮抗实验 | BIBN-4096 | Med Chem Express | -- |
| 免疫荧光染色 | Triton X-100 | Solarbio | -- |
| 牛血清白蛋白 | Solarbio | -- | |
| APC偶联抗βIII-微管蛋白抗体 | BioLegend | -- | |
| 兔抗c-FOS抗体 | Abcam | ab222699 | |
| 小鼠抗胆碱乙酰转移酶抗体 | Sigma | AMAB91130 | |
| 小鼠抗Mist1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | SC80984 | |
| 兔抗CCNA2抗体 | Proteintech | 18202-1-AP | |
| 兔抗Ki67抗体 | Abcam | ab16667 | |
| 兔抗PCNA抗体 | Proteintech | 10205-2-AP | |
| 兔抗CDK1抗体 | Proteintech | 19532-1-AP | |
| Alexa Fluor 488标记驴抗兔IgG抗体 | Invitrogen | -- | |
| Alexa Fluor 594标记驴抗小鼠IgG抗体 | Invitrogen | -- | |
| DAPI | Solarbio | C0065 | |
| ELISA分析 | CGRP ELISA试剂盒 | Bertin Pharma/SPIbio | -- |
| SP ELISA试剂盒 | Cayman | -- | |
| RNA提取和PCR | Nucleospin RNA提取试剂盒 | Transgen | -- |
| HiScript III RT SuperMix逆转录试剂盒 | Vazyme | -- | |
| SYBR Green试剂 | Roche | -- | |
| Applied Biosystems 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- |
| 辣根过氧化物酶标记二抗 | Proteintech | -- | |
| ECL化学发光试剂盒 | Millipore | -- | |
| 转录组测序 | HISAT2 | -- | -- |
| DESeq2 | -- | -- | |
| clusterProfiler | -- | -- | |
| 统计 | GraphPad Prism 8 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 手术去神经模型 | 小鼠品系、年龄、性别;麻醉方式;手术具体操作(挤压睫状神经45秒);术后角膜敏感性和泪液分泌测量方法及时间点 阅读提示:Materials and Methods - Experimental Models 及 Figure 1 |
| 药理学去神经模型 | 辣椒素或RTX的浓度、溶剂、给药途径和次数;处理后角膜敏感性和泪液分泌测量时间点 阅读提示:Materials and Methods - Experimental Models 及 Figure 1, 3 |
| TRPV1神经元消融模型 | Trpv1-Cre/DTR小鼠的构建;DT的剂量、给药方案(8 µg/kg,连续5天,间隔2天,持续3周);泪液分泌测量时间点 阅读提示:Materials and Methods - Experimental Models 及 Figure 2 |
| CGRP或SP给药 | 给药剂量(CGRP 10.5 µM;SP 15 µM)、给药途径(结膜下注射)、给药时间(处理前24小时和即时);泪液分泌测量时间点 阅读提示:Materials and Methods - Experimental Models 及 Figure 4 |
| BIBN-4096给药 | BIBN-4096剂量(2 µg/µL)、给药途径(结膜下注射)、给药频率(连续3天);泪液分泌测量时间点 阅读提示:Materials and Methods - Experimental Models 及 Figure 4 |
| SSN激活检测 | 处理时间(CGRP给药后1小时);脑组织固定和切片条件;c-FOS和ChAT双标免疫染色的抗体浓度和孵育条件 阅读提示:Materials and Methods - Immunofluorescence Staining 及 Figure 5 |
| 泪腺转录组测序 | 样本分组(对照、辣椒素、辣椒素+CGRP);RNA提取方法;差异表达基因阈值(log2FC≥1,调整后P<0.05);富集分析方法 阅读提示:Materials and Methods - RNA Sequencing and Bioinformatics Analysis 及 Figure 6 |
| 泪腺腺泡细胞增殖分析 | 免疫荧光标志物(MIST1, CCNA2, Ki67, PCNA, CDK1);组织固定和切片条件;结果定量方法 阅读提示:Materials and Methods - Immunofluorescence Staining 及 Figure 7 |