验证METTL3在IBD中的表达
评估METTL3在IBD患者和DSS诱导结肠炎小鼠中的表达变化。
通过免疫荧光染色检测IBD患者结肠组织中的METTL3表达,并通过qRT-PCR和免疫荧光检测DSS处理小鼠结肠中Mettl3的表达。
Inhibition of METTL3 in macrophages provides protection against intestinal inflammation
包括患者样本、DSS诱导小鼠模型、巨噬细胞特异性敲除、骨髓嵌合、BMDM功能实验、RNA-seq和蛋白质组学等,并包含功能验证和机制验证。
DSS诱导的结肠炎小鼠模型 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) THP-1来源的巨噬细胞 IBD患者结肠组织
METTL3在巨噬细胞中的表达水平 DSS诱导结肠炎的小鼠模型及METTL3敲除 代谢重编程和Th1细胞分化 METTL3抑制剂F039-0002和7460-0250的剂量和给药方式
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估METTL3在IBD患者和DSS诱导结肠炎小鼠中的表达变化。
通过免疫荧光染色检测IBD患者结肠组织中的METTL3表达,并通过qRT-PCR和免疫荧光检测DSS处理小鼠结肠中Mettl3的表达。
确定巨噬细胞中METTL3缺失对DSS诱导结肠炎的作用。
使用Lyz2-Cre小鼠与Mettl3fl/fl小鼠杂交获得巨噬细胞特异性敲除小鼠,通过DSS处理诱导结肠炎,评估体重、结肠长度、组织学评分、炎症因子表达等指标。
确认METTL3的抗炎效应依赖于巨噬细胞。
通过骨髓嵌合和巨噬细胞耗竭实验,评估METTL3在巨噬细胞中的特异性作用。
研究METTL3缺失的巨噬细胞对T细胞分化的影响。
通过流式细胞术分析结肠中CD4+ T细胞亚群,并共培养BMDMs与T细胞检测Th1和Th17分化。
寻找METTL3调控的下游基因。
通过RNA-seq和蛋白质组学分析差异表达基因,结合m6A-seq和RIP-qPCR验证靶基因,并鉴定m6A修饰位点。
探究METTL3调节结肠炎是否涉及糖代谢重编程。
通过代谢组学、Seahorse实验和PPP抑制剂处理,分析METTL3缺失对代谢的影响。
筛选抑制METTL3活性的小分子化合物。
基于结构虚拟筛选,通过m6A甲基转移酶测定、SPR等验证抑制剂活性,并在DSS小鼠模型中评估治疗效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 巨噬细胞集落刺激因子 | -- | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| PrimeScript qRT-PCR试剂盒 | Takara | -- | |
| SYBR Green Supermix | Takara | -- | |
| 免疫印迹 | 抗METTL3抗体 | Abcam | 195352 |
| 抗PGP抗体 | Santa Cruz | sc-390883 | |
| 抗YTHDF1抗体 | Proteintech | 17479-1-AP | |
| 抗YTHDF2抗体 | Abcam | ab220163 | |
| 抗YTHDF3抗体 | Proteintech | 25537-1-AP | |
| 抗YTHDC2抗体 | Proteintech | 27779-1-AP | |
| 抗IGF2BP2抗体 | Proteintech | 11601-1-AP | |
| 抗IGF2BP3抗体 | Proteintech | 14642-1-AP | |
| 抗HNRNPA2/B1抗体 | Proteintech | 14813-1-AP | |
| 抗β-actin抗体 | Sigma | A5441 | |
| HRP标记的抗小鼠IgG | Cell Signaling Technology | 7076 | |
| HRP标记的抗兔IgG | Cell Signaling Technology | 7074 | |
| 诱导结肠炎 | 葡聚糖硫酸钠 | MP Biomedicals | -- |
| 中性粒细胞耗竭 | 抗Ly6G抗体 | -- | BP0075-1 |
| 流式细胞术 | 抗CD11b-PE-Cy7抗体 | BD Biosciences | M1/70 |
| 抗F4/80-APC抗体 | BD Biosciences | T45-2342 | |
| 抗F4/80-PE抗体 | BD Biosciences | T45-2342 | |
| 抗CD4-FITC抗体 | BD Biosciences | RM4-5 | |
| 抗IFN-γ-Alexa Fluor 647抗体 | BD Biosciences | XMG1.2 | |
| 抗IL-4-PE抗体 | BD Biosciences | 11B11 | |
| 抗Foxp3-PE抗体 | BD Biosciences | R16-715 | |
| 抗IL-17A-PE抗体 | BD Biosciences | TC11-18H10 | |
| 固定和透化液 | BD Biosciences | -- | |
| 免疫荧光染色 | 抗F4/80抗体 | Abcam | ab6640 |
| 抗ARG1抗体 | Cell Signaling Technology | 93668 | |
| 抗CD206抗体 | Abcam | ab64693 | |
| 测序 | Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 代谢检测 | Seahorse XF糖酵解压力测试试剂盒 | Agilent | -- |
| Seahorse XF细胞线粒体压力测试试剂盒 | Agilent | -- | |
| Seahorse XF24分析仪 | Agilent | -- | |
| 代谢物分析 | 液相色谱-质谱联用 | -- | -- |
| 虚拟筛选 | Chemdiv2019数据库 | -- | -- |
| 甲基转移酶测定 | MTase-Glo甲基转移酶测定 | Promega | -- |
| SPR分析 | Biacore T200系统 | GE Healthcare | -- |
| m6A RIP | Magna MeRIP m6A试剂盒 | Millipore | 17-10499 |
| RNA免疫沉淀 | 抗YTHDF3抗体 | Proteintech | 25537-1-AP |
| m6A定量 | EpiQuik m6A RNA甲基化定量试剂盒 | EpiGentek | P-9005 |
| RNA纯化 | Dynabeads mRNA纯化试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 61012 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)的分离和分化条件:是否使用40 ng/mL M-CSF培养7天;培养基是否含10% FBS。 阅读提示:见Methods 'Generation of bone marrow-derived macrophages (BMDMs)' |
| 诱导结肠炎小鼠模型 | DSS分子量(36-50 kDa)、浓度(2.5%)、饮用天数(7天)及后续正常饮水(2天);小鼠品系(C57BL/6)和年龄(6-12周)。 阅读提示:见Methods 'Induction of colitis' |
| 代谢分析 | 13C-葡萄糖标记时间(24小时)、细胞数量(2×10^5)、提取溶剂(冷80%甲醇);Seahorse实验中细胞密度和药物处理顺序。 阅读提示:见Methods 'LC-MS analysis of metabolites'和'Seahorse assays' |
| m6A和RNA免疫沉淀 | 使用的试剂盒(Magna MeRIP m6A Kit, 17-10499)和抗体(抗YTHDF3, 25537-1-AP);RNA用量(2 μg);洗脱和提取方法。 阅读提示:见Methods 'm6A-RIP-PCR'和'RNA immunoprecipitation (RIP)' |
| 药物处理 | METTL3抑制剂F039-0002和7460-0250的给药剂量(10, 20, 40 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、频率(每两天一次)和持续时间(14天);在DSS模型中的给药时间和剂量。 阅读提示:见Results 'METTL3-targeting inhibitors ameliorate disease symptoms...'和Methods 'Induction of colitis' |