年龄和氧化应激调节人关节软骨细胞中Nrf2的稳态

Age and oxidative stress regulate Nrf2 homeostasis in human articular chondrocytes

作者信息Earnest L Taylor, John A Collins, Pryia Gopalakrishnan, Susan Chubinskaya, Richard F Loeser
PMID37160250
发布时间2023-09
DOI10.1016/j.joca.2023.05.004

实验完整度

包含多供体原代细胞、免疫印迹、qPCR、免疫组化、siRNA敲低和药物激活等功能验证,但缺乏体内模型。

主要模型

人原代软骨细胞(取自年轻、老年和OA供体) 软骨组织(免疫组化) OA软骨细胞3D微团培养 软骨外植体

重点核对

供体年龄和OA状态(年龄分层:年轻≤45岁,老年≥50岁,OA来自膝关节置换) 氧化应激诱导剂甲萘醌浓度(25 μM)和处理时间(0-60分钟) Nrf2敲低siRNA浓度(1 μM和2 μM)和转染方法 Nrf2激活剂RTA-408浓度(10 nM或20 nM)和处理时间(48小时) IGF-1浓度(100 ng/mL)和处理时间(24小时)

摘要

目的:本研究的目的是探讨年龄和氧化应激对年轻、老年和骨关节炎人关节软骨细胞中Nrf2调节的影响。设计:通过免疫印迹、qPCR和免疫组化检测从年轻、老年和OA供体分离的原代人软骨细胞中Nrf2的水平。在诱导氧化应激(用甲萘醌)、siRNA敲低Nrf2和/或用RTA-408激活Nrf2后,评估对Nrf2水平、Nrf2调节的抗氧化蛋白、p65以及IGF-1合成代谢反应的影响。结果:与年轻细胞相比,老年软骨细胞(约0.59倍;p=0.034)和OA软骨细胞(约0.50倍;p=0.016)中Nrf2蛋白水平显著降低。甲萘醌使年轻软骨细胞中Nrf2蛋白水平显著增加近4倍,而老年细胞无明显变化。Nrf2敲低和激活差异调节抗氧化蛋白水平,包括Srx和NQO1。在IGF-1处理的OA软骨细胞中,用RTA-408激活Nrf2还降低了基础p65磷酸化,增加了聚集蛋白聚糖和II型胶原基因表达,并增加了蛋白聚糖的产生。结论:旨在维持Nrf2活性的靶向治疗策略可能通过维持细胞内抗氧化功能和氧化还原平衡来维持软骨细胞稳态。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
年龄和氧化应激如何影响人关节软骨细胞中Nrf2的稳态,以及Nrf2的敲低和激活对软骨细胞抗氧化防御、NF-κB信号和合成代谢反应的影响。
核心机制
年龄和OA导致软骨细胞Nrf2水平降低,并减弱急性氧化应激诱导的Nrf2核转位;Nrf2调节抗氧化蛋白(如Srx、NQO1)的表达,激活Nrf2可抑制p65磷酸化,并增强OA软骨细胞对IGF-1的合成代谢反应。
主要证据
免疫印迹显示老年和OA软骨细胞中Nrf2蛋白水平降低;甲萘醌处理在年轻细胞中诱导Nrf2核转位,但老年细胞无此反应;siRNA敲低Nrf2降低Srx、HO-1和NQO1水平,RTA-408激活Nrf2增加这些蛋白并降低p65磷酸化;RTA-408预处理恢复OA软骨细胞中IGF-1诱导的聚集蛋白聚糖和Col2a1表达以及GAG产生。
研究意义
维持Nrf2活性的靶向治疗策略可能通过维持细胞内抗氧化功能和氧化还原平衡来维持软骨细胞稳态,为骨关节炎治疗提供新途径。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测不同年龄和OA状态软骨细胞中Nrf2的基础水平

比较年轻、老年和OA供体软骨细胞中Nrf2蛋白和mRNA水平的差异。

分离人软骨细胞,通过免疫印迹检测Nrf2蛋白,qRT-PCR检测Nrf2 mRNA,免疫组化检测软骨组织中的Nrf2。

2

评估氧化应激条件下Nrf2的诱导和亚细胞定位

检测急性氧化应激刺激后Nrf2蛋白水平及核转位变化。

用25 μM甲萘醌处理年轻和老年软骨细胞不同时间,免疫印迹检测总Nrf2,细胞分级检测胞质和核内Nrf2。

3

Nrf2功能验证:敲低和激活

确定Nrf2调控的靶基因和特异性。

使用siRNA敲低Nrf2,或用RTA-408激活Nrf2,免疫印迹检测Nrf2及其靶蛋白(Srx、HO-1、NQO1等)水平。

4

检测Nrf2激活对NF-κB信号的影响

验证Nrf2激活是否调节p65磷酸化及亚细胞分布。

RTA-408处理正常和OA软骨细胞,细胞分级后免疫印迹检测p-p65和t-p65。

5

评估Nrf2激活对软骨细胞合成代谢和IGF-1反应的影响

检验Nrf2激活是否增强软骨细胞对IGF-1的合成代谢反应。

RTA-408预处理后IGF-1刺激,通过qPCR检测聚集蛋白聚糖和Col2a1表达,3D培养中检测GAG产生。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证细胞功能变化

产品清单

实验环节名称品牌货号
Nrf2抗体Abcam62352
β-肌动蛋白抗体Abcam8226
Prx1抗体Abcam109506
Srx1抗体ProteinTech14273-1
LDH抗体Fitzgerald20-LG22
HO-1抗体Cell Signaling Technology5061
NQO1抗体Cell Signaling Technology62262
TXNIP抗体Cell Signaling Technology14715
总p65抗体Cell Signaling Technology8242
磷酸化p65抗体Cell Signaling Technology3031
β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology2146
Lamin B抗体Cell Signaling Technology12586
细胞裂解缓冲液Cell Signaling Technology--
蛋白酶抑制剂混合物----
Pierce™ BCA蛋白测定试剂盒ThermoFisher Scientific--
NE-PER核和细胞质提取试剂ThermoFisher Scientific--
NFE2L2 Smart Pool siRNADharmacon--
非特异性对照siRNADharmaconD-001810-0X
RTA-408MedChem Express--
Amaxa原代细胞核转染试剂Lonza--
RNeasy迷你试剂盒Qiagen--
ImProm-II™逆转录酶系统Promega--
QuantStudio™ 6 Flex实时荧光定量PCR仪Applied Biosystems--
GAG检测试剂盒Chondrex Inc--
VECTASTAIN Elite ABC HRP试剂盒Vector Laboratories--
DMEM培养基----
重组人IGF-1Austral BiologicalsGF050-8

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
供体样本
供体年龄定义(年轻≤45岁,老年≥50岁)、组织来源(正常距骨/OA膝关节)、样本量(免疫印迹:年轻n=13、老年n=14、OA n=12等)
阅读提示:Materials and Methods:Human articular chondrocyte isolation and culture;Fig. 1 图注
氧化应激诱导
甲萘醌浓度(25 μM)、处理时间(0-60分钟)
阅读提示:Materials and Methods:Human articular chondrocyte isolation and culture;Fig. 2 图注
Nrf2敲低
siRNA浓度(1 μM和2 μM)、核转染方法(Lonza nucleofection)、敲低效率(约89%)
阅读提示:Materials and Methods:Nrf2 knockdown and activation;Fig. 3 图注
Nrf2激活
RTA-408浓度(10 nM或20 nM)、处理时间(48小时)
阅读提示:Materials and Methods:Nrf2 knockdown and activation;Fig. 4 图注
IGF-1刺激和合成代谢反应
IGF-1浓度(100 ng/mL)、处理时间(24小时)、预处理方案(RTA-408 48小时)、3D培养条件(4×10^5细胞/微团,150g离心5分钟,每48小时换液,培养21天)
阅读提示:Materials and Methods:Nrf2 knockdown and activation,Proteoglycan assay;Fig. 6-7 图注
免疫组化
固定液(福尔马林48小时)、脱钙(EDTA)、切片厚度(5微米)、抗原修复(枸橼酸盐缓冲液60°C 1小时)、Nrf2抗体稀释度(1:250)
阅读提示:Materials and Methods:Immunohistochemistry;Fig. 1D 图注