IL-21分泌型沙门氏菌的构建与体外表征
构建能够分泌IL-21的工程菌株并验证其分泌能力
将FlgM-mIL-21融合蛋白克隆至pBAD18质粒,并敲除沙门氏菌的asd和rcsB基因,构建菌株#1237。通过Western blot和ELISA检测IL-21的表达和分泌,并评估生长曲线和运动性。
Attenuated Salmonella secreting interleukin-21 activates T-cells and induces anti-tumor effects
包含菌株构建与体外表征(Western blot、ELISA)、CT26荷瘤小鼠模型体内疗效与免疫分析(流式、IF)、联合抗PD-L1治疗及生物分布与安全性评估。
CT26结肠癌细胞皮下移植的BALB/c小鼠模型 分泌IL-21的减毒沙门氏菌菌株(flgM-mIL-21-flhDC-pBAD18-asd+/#1237)
菌株构建:aroA、aroD、asd、rcsB基因缺失的沙门氏菌SL1344突变株。 IL-21分泌诱导:0.2% L-阿拉伯糖诱导,腹腔注射给予80 mg/只/天,从感染后第3天开始。 肿瘤模型:CT26细胞(5×10^5)皮下注射于BALB/c小鼠右胁,肿瘤体积约100 mm3时开始治疗。 给药:沙门氏菌2×10^7 CFU静脉注射;抗PD-L1抗体200 μg/只腹腔注射,第0、3、6、9天。 体内分布与安全性:IVIS成像、菌落计数、血清生化指标(ALT、AST等)检测。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建能够分泌IL-21的工程菌株并验证其分泌能力
将FlgM-mIL-21融合蛋白克隆至pBAD18质粒,并敲除沙门氏菌的asd和rcsB基因,构建菌株#1237。通过Western blot和ELISA检测IL-21的表达和分泌,并评估生长曲线和运动性。
评估IL-21分泌型沙门氏菌在体内的抗肿瘤效果
向BALB/c小鼠皮下注射CT26细胞建立肿瘤模型,当肿瘤体积达到100-150 mm3时,静脉注射沙门氏菌,并通过腹腔注射L-阿拉伯糖诱导IL-21分泌。监测肿瘤体积、体重和生存率,并通过TUNEL和Ki-67染色分析肿瘤细胞凋亡和增殖。
验证IL-21分泌对T细胞浸润和细胞毒性活性的影响
在体内实验第7天收集肿瘤,通过流式细胞术和免疫荧光染色分析CD4+和CD8+ T细胞浸润,并检测CD8+ T细胞中颗粒酶B、穿孔素和IFN-γ的表达。同时用ELISA测量肿瘤组织中的IL-21浓度。
检验IL-21分泌型沙门氏菌与抗PD-L1抗体联合治疗是否增强抗肿瘤效果
在CT26荷瘤小鼠中,静脉注射沙门氏菌并腹腔注射抗PD-L1抗体(200 μg/只,第0、3、6、9天),同时给予L-阿拉伯糖诱导IL-21分泌。监测肿瘤体积、生存率,并分析肿瘤组织的凋亡和增殖指标。
评估沙门氏菌在体内的肿瘤靶向性和安全性
静脉注射表达荧光素酶的沙门氏菌(#2487),通过IVIS成像观察细菌在肿瘤和主要器官的分布。在感染后第1、7、14天测定细菌载量,并检测血清中ALT、AST、BUN、CREA水平和脾脏大小及组织病理学变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细菌培养 | LB肉汤 | -- | -- |
| Western blot | 抗His抗体 | SouthernBiotech | SB194b |
| 抗小鼠IL-21抗体 | R&D Systems | MAB594 | |
| HRP标记的抗小鼠IgG | Cell Signaling Technology | 7076 | |
| HRP标记的抗大鼠IgG | Abcam | AB97057 | |
| ELISA | 小鼠IL-21 ELISA试剂盒 | Proteintech | KE10012 |
| 限制性内切酶消化 | NheI限制性内切酶 | Takara Bio | 1241A |
| SacI限制性内切酶 | Takara Bio | 1078A | |
| SalI限制性内切酶 | Takara Bio | 1080A | |
| ClaI限制性内切酶 | Takara Bio | 1034A | |
| 动物实验 | 抗PD-L1抗体 | Bio X cell | -- |
| 流式细胞术 | 抗CD3-PE-eF610抗体 | eBioscience | 61-0031-82 |
| 抗CD4-PerCP抗体 | eBioscience | 46-0041-82 | |
| 抗CD8-AF700抗体 | eBioscience | 56-0081-82 | |
| 抗FVD-APC-Cy7抗体 | eBioscience | 65-0865-14 | |
| 流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 免疫组织化学 | TUNEL检测试剂盒-HRP-DAB | Abcam | AB206386 |
| 抗Ki-67抗体 | Cell Signaling Technology | 12202 | |
| DAB检测系统 | Dako | K3468 | |
| 免疫荧光 | 抗CD4抗体 | Abcam | 183685 |
| 抗CD8α抗体 | Abcam | AB22378 | |
| 抗IFN-γ抗体 | Abcam | 133566 | |
| 抗颗粒酶B抗体 | Cell Signaling Technology | 17215S | |
| 抗穿孔素抗体 | Cell Signaling Technology | 44865S | |
| 抗PD-L1抗体 | Abcam | AB213480 | |
| 共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 体内成像 | IVIS Spectrum小动物活体成像系统 | -- | -- |
| 细胞培养 | CT26细胞 | -- | -- |
| 细菌培养 | pGEN-luxCDABE质粒 | Addgene | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 菌株构建与培养 | Salmonella菌株基因型(aroA、aroD、asd、rcsB缺失),质粒构建细节(flgM-mIL-21融合),L-阿拉伯糖诱导浓度(0.2%),培养条件(37°C,250 rpm,OD600至0.2时诱导)。 阅读提示:Methods 2.1-2.5 |
| 动物模型建立 | BALB/c小鼠品系、性别、周龄、体重;CT26细胞接种数量和部位;肿瘤体积达到100-150 mm3的处理时机。 阅读提示:Methods 2.6 |
| 治疗给药方案 | 沙门氏菌菌株、剂量(2×10^7 CFU)、给药途径(静脉注射);L-阿拉伯糖剂量(80 mg/只)、给药途径(腹腔注射)、给药时机(感染后第3天起每日);抗PD-L1抗体剂量(200 μg/只)、给药时间(第0、3、6、9天)。 阅读提示:Methods 2.6 |
| 免疫分析 | 肿瘤组织采集时间点(第7天);流式细胞术抗体组合及其浓度;免疫荧光抗体及其浓度;ELISA检测IL-21的方法。 阅读提示:Methods 2.7, 2.8 |
| 体内分布和安全性评估 | 注射菌株(#2487),成像时间点;细菌载量测定时间点(第1、7、14天);血清生化指标检测时间点。 阅读提示:Methods 2.9-2.11 |
| 数据分析 | 统计方法(t检验或Mann-Whitney U检验),显著性水平(P<0.05),数据展示(平均值±SEM)。 阅读提示:Methods 2.12 |