分离和鉴定活性化合物
从滇南地黄连中分离并鉴定具有抗TNBC活性的化合物。
对滇南地黄连植物材料进行提取、分离和纯化,得到两种柠檬苦素 DHL-10 和 DHL-11,并通过结构鉴定确认其类型。
DHL-11, a novel prieurianin-type limonoid isolated from Munronia henryi, targeting IMPDH2 to inhibit triple-negative breast cancer
实验涵盖体外细胞功能验证、分子机制探索(靶点结合、蛋白降解、通路分析)、患者来源类器官及体内动物模型等多个独立证据层级,并包含功能验证(敲低/过表达)和机制验证(SPR、DARTS、CETSA、分子对接)。
三阴性乳腺癌细胞系(MDA-MB-231、HCC1806) 患者来源乳腺癌类器官(PDO) HCC1806 细胞系异种移植裸鼠模型 4T1 细胞尾静脉注射肺转移裸鼠模型
DHL-11 处理浓度梯度(0.5–2 μmol/L)及时间 IMPDH2 敲低或过表达对 DHL-11 敏感性的影响 DHL-11 与 IMPDH2 的结合亲和力(SPR、DARTS、CETSA) 体内实验中 DHL-11 的给药剂量(3 mg/kg)和方式(口服) FANCI 与 IMPDH2 的相互作用是否被 DHL-11 破坏
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从滇南地黄连中分离并鉴定具有抗TNBC活性的化合物。
对滇南地黄连植物材料进行提取、分离和纯化,得到两种柠檬苦素 DHL-10 和 DHL-11,并通过结构鉴定确认其类型。
评估 DHL-11 对多种乳腺癌细胞系的增殖抑制作用,并确定其对 TNBC 的选择性。
使用 SRB 法检测 DHL-11 对 ER+、HER2+ 和 TNBC 细胞系的细胞活力,计算 IC50 值,并通过克隆形成、EdU 掺入和细胞周期分析评估其抗增殖和周期阻滞作用。
确定 DHL-11 对 TNBC 细胞迁移、侵袭和凋亡的影响。
通过伤口愈合、Transwell 迁移和侵袭实验评估 DHL-11 对细胞迁移和侵袭的抑制作用。通过 Annexin V/PI 染色和流式细胞术分析凋亡,并通过 Western blot 检测凋亡相关蛋白。
探究 DHL-11 是否通过增加 ROS 水平诱导 DNA 损伤。
通过 RNA-seq 分析 DHL-11 处理后的差异表达基因和相关通路。检测 γH2AX 水平评估 DNA 损伤,使用流式细胞术检测 ROS 水平,并使用 ROS 抑制剂 NAC 验证 ROS 在 DHL-11 作用中的功能。
确定 DHL-11 在 TNBC 细胞中的直接作用靶蛋白。
使用基于 SPR 的靶点捕获技术(MS-SPRi)鉴定 DHL-11 的结合蛋白,并通过 SPR、DARTS、CETSA 和分子对接验证 DHL-11 与候选靶点 IMPDH2 的直接结合。
验证 DHL-11 是否通过抑制 IMPDH2 的鸟嘌呤合成功能来发挥抗肿瘤作用。
使用 LC-MS/MS 检测 DHL-11 处理后细胞内鸟嘌呤水平的变化。通过外源补充鸟嘌呤和 IMPDH2 过表达实验评估能否逆转 DHL-11 的抗肿瘤活性、ROS 积累和 DNA 损伤。
揭示 DHL-11 如何导致 IMPDH2 蛋白降解,并明确其与已知抑制剂 MPA 的区别。
检测 DHL-11 对 IMPDH2 mRNA 水平的影响。使用蛋白酶体或溶酶体抑制剂确定降解途径。通过 CHX 追踪实验检测蛋白半衰期,并检测 IMPDH2 泛素化水平。使用 Co-IP 验证 DHL-11 对 FANCI-IMPDH2 相互作用的影响。与 MPA 进行功能比较。
评估 IMPDH2 和 FANCI 在 TNBC 中的表达、预后价值及作为治疗靶点的潜力。
分析 TCGA 数据库及临床样本中 IMPDH2 和 FANCI 的表达与预后相关性。通过敲低 IMPDH2 或 FANCI 观察对细胞增殖、周期、ROS 和 DNA 损伤的影响。
评估 DHL-11 对患者来源类器官和体内异种移植瘤生长的抑制效果及生物安全性。
建立患者来源乳腺癌类器官,检测 DHL-11 的抑制效果和 IC50,并分析 IMPDH2 表达与敏感性的关系。建立 HCC1806 异种移植裸鼠模型,通过口服给药评估 DHL-11 对肿瘤生长、体重及肝肾功能指标的影响。
在体内外验证 DHL-11 的抗肿瘤活性依赖于 IMPDH2 和 FANCI。
通过敲低或过表达 FANCI 或 IMPDH2,检测其对 DHL-11 敏感性的影响。构建 IMPDH2 结合位点突变体(MUT1/MUT2),验证 DHL-11 作用的关键氨基酸。在 IMPDH2 过表达的异种移植模型中验证 DHL-11 的抑制作用是否减弱。
评估 DHL-11 在体内对 TNBC 肺转移的抑制作用。
通过尾静脉注射 4T1-luc 细胞建立肺转移模型,给予 DHL-11 或对照处理,通过生物发光成像和 H&E 染色评估肺转移情况。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12 培养基 | Gibco | -- |
| RPMI1640 培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素溶液 | Solarbio | -- | |
| 细胞转染 | Opti-MEM 培养基 | Gibco | -- |
| Lipofectamine 2000 转染试剂 | Invitrogen | -- | |
| 聚乙烯亚胺 | Plybiosciences | -- | |
| 慢病毒包装 | psPAX2 包装质粒 | -- | -- |
| pMD2.G 包装质粒 | -- | -- | |
| pCDH-IMPDH2-3′Flag 表达质粒 | -- | -- | |
| 细胞筛选 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| ROS 检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | S0033 |
| DCFH-DA 荧光探针 | -- | -- | |
| 类器官培养 | 肿瘤组织消化液 | Biogenous | -- |
| 红细胞裂解液 | Biosharp | -- | |
| 生长因子减小的 Matrigel 基质胶 | Biogenous | -- | |
| 类器官活力检测 | 类器官活力 ATP 检测试剂盒 | Biogenous | -- |
| RNA-seq | Trizol 试剂 | -- | -- |
| RT-qPCR | HiScript II Q RT SuperMix for qPCR (+gDNA wiper) 试剂盒 | -- | -- |
| SYBR qPCR 预混液 | Roche | -- | |
| QuantStudio 3 实时荧光定量 PCR 仪 | Applied Biosystems | -- | |
| IHC | 抗 Ki67 抗体 | Fuzhou Maixin Biotech | -- |
| 动物实验 | AST 检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| ALT 检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| CRE 检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| SPR | Biacore S200 表面等离子体共振仪 | -- | -- |
| CM5 传感芯片 | -- | -- | |
| 霉酚酸 | MCE | HY-B0421 | |
| Western blot | CDC2 抗体 | Cell Signaling Technology | 77055S |
| Cyclin B1 抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-245 | |
| p-27 抗体 | Cell Signaling Technology | 3686S | |
| Bcl-2 抗体 | Cell Signaling Technology | 3498 | |
| Caspase-8 抗体 | Cell Signaling Technology | 9746 | |
| Caspase-9 抗体 | Cell Signaling Technology | 9502 | |
| CDC25 抗体 | Proteintech | A12234 | |
| GAPDH 抗体 | Santa Cruz Biotechnology | SC-32233 | |
| FANCI 抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-271316 | |
| Vinculin 抗体 | Sigma–Aldrich | V9131 | |
| IMPDH2 抗体 | Zenbio | R26909 | |
| γH2AX 抗体 | ABclonal | AP0687 | |
| IHC | Ki-67 抗体 | MXB Biotechnologies | MAB-0672 |
| 分子模拟 | Avogadro 1.2.0 软件 | -- | -- |
| AutoDock Vina 1.2.0 软件 | -- | -- | |
| GROMACS 5.1.4 软件 | -- | -- | |
| AMBER99SB-ILDN 力场 | -- | -- | |
| 通用琥珀力场 | -- | -- | |
| AmberTools20 软件 | -- | -- | |
| gmx_MMPBSA 软件 | -- | -- | |
| AlphaFold 3 软件 | -- | -- | |
| PDBsum 数据库 | -- | -- | |
| 数据处理 | Fastp 软件 | -- | -- |
| HISAT2 软件 | -- | -- | |
| StringTie 软件 | -- | -- | |
| R 包 edger | -- | -- | |
| DAVID 软件 | -- | -- | |
| 质谱数据分析 | MaxQuant 软件 | COX LAB | 1.3.0.5 |
| Proteome Discoverer 软件 | Thermo Fisher Scientific | 1.7 | |
| 统计分析 | Prism v.8.0.2 统计软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源与培养条件(MDA-MB-231、HCC1806),培养基种类及血清浓度,孵育条件(37 °C, 5% CO2) 阅读提示:Materials and methods 2.1 Cell culture and treatment |
| 细胞活力检测 | DHL-11 处理浓度、梯度设置、处理时间 阅读提示:Results 3.1 及 Figure 2 图例 |
| 细胞凋亡分析 | DHL-11 处理浓度及时间,Annexin V/PI 染色流程 阅读提示:Results 3.2 及 Figure 3 图例 |
| ROS 检测 | DHL-11 处理浓度和时间,DCFH-DA 探针稀释比例和孵育时间 阅读提示:Materials and methods 2.6 ROS detection |
| 靶点结合验证 | SPR 实验中 DHL-11 和 MPA 的浓度梯度,DARTS 中 DHL-11 浓度和蛋白酶 K 比例,CETSA 中 DHL-11 处理时间和温度梯度 阅读提示:Materials and methods 2.11 SPR, 2.12 CETSA, 2.13 DARTS |
| 蛋白质降解机制 | DHL-11 处理浓度和时间,MG132 和 NH4Cl 浓度,CHX 浓度和追踪时间点 阅读提示:Results 3.5 及 Figure 6 图例 |
| 体内药效评价 | 动物品系、周龄、性别,细胞接种数量和部位,DHL-11 给药剂量、频率和途径,肿瘤体积和体重测量频率,样本量(每组 n) 阅读提示:Materials and methods 2.17 Animal experiments |