线粒体呼吸是CD8+ T细胞增殖和细胞命运所必需的

Mitochondrial respiration is necessary for CD8+ T cell proliferation and cell fate

作者信息Elizabeth M Steinert, Beatriz Furtado Bruza, Veronika D Danchine, Rogan A Grant, Karthik Vasan, Arjun Kharel, Yuqi Zhang, Weiguo Cui, Marten Szibor, Samuel E Weinberg, Navdeep S Chandel
PMID40670617
发布时间2025-08
DOI10.1038/s41590-025-02202-x

实验完整度

包含多种遗传修饰小鼠模型(CD4-Cre、Gzmb-CreERT2、P14转基因)、体外激活与增殖实验、体内LCMV感染模型、肿瘤模型、RNA-seq转录组分析及代谢组学检测,多层级验证功能与机制。

主要模型

CD4-Cre RISPfl/fl AOXLSL小鼠来源的CD8+ T细胞 Gzmb-CreERT2 QPCfl/fl AOXLSL P14转基因CD8+ T细胞 MC38-gp33肿瘤模型 LCMV Armstrong和Clone 13感染模型

重点核对

线粒体复合物III亚基RISP或QPC的条件性敲除 AOX表达恢复呼吸但不产生ROS CD8+ T细胞增殖依赖于复合物III呼吸功能但非ROS 急性抗原刺激诱导复合物III缺陷细胞表达耗竭标志物 记忆形成需要复合物III来源的ROS

摘要

线粒体电子传递链(ETC)功能与ATP的产生、信号分子(包括活性氧(ROS)、嘧啶和三羧酸循环代谢物)的生成有关。线粒体电子传递是T细胞增殖所必需的。然而,线粒体ETC的哪些功能对CD8+ T细胞反应的每个动态状态是必需的尚不清楚。在这里,我们报告,损害线粒体复合物III功能,这会减少呼吸、与ATP产生相关的质子泵送和超氧化物产生,会减少外周初始T细胞数量、抗原诱导的CD8+ T细胞增殖和记忆形成。对线粒体复合物III缺陷的CD8+ T细胞的急性刺激诱导了类似耗竭的表型。在线粒体复合物III缺陷的CD8+ T细胞中表达海鞘(Ciona intestinalis)替代氧化酶(AOX)可恢复呼吸,而不产生ROS或质子泵送,并可挽救增殖和耗竭表型,但不能挽救初始或记忆形成。因此,T细胞发育、增殖和记忆形成对线粒体复合物III ROS有不同的需求。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
线粒体复合物III的不同功能(呼吸、ROS产生)在CD8+ T细胞发育、增殖和记忆形成中各自的作用是什么?
核心机制
线粒体复合物III产生的ROS对初始和记忆CD8+ T细胞群体的建立和维持至关重要,而复合物III的呼吸功能独立于ROS,通过维持呼吸耦合代谢来防止急性刺激后CD8+ T细胞耗竭样表型的产生。
主要证据
利用RISP或QPC条件敲除小鼠和AOX表达,在体外、LCMV感染和肿瘤模型中观察到:复合物III缺失导致初始和记忆T细胞减少,增殖缺陷,并诱导耗竭状表型;AOX表达恢复增殖并抑制耗竭,但记忆形成仍受损。
研究意义
揭示CD8+ T细胞发育、增殖和记忆形成对线粒体复合物III ROS的不同需求,为改善T细胞免疫治疗的代谢适应性提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建条件性敲除和AOX表达小鼠模型

特异性地阻断线粒体复合物III功能并恢复呼吸以区分ROS和呼吸的作用。

使用CD4-Cre、Gzmb-CreERT2等Cre工具与RISPfl/fl或QPCfl/fl及AOXLSL小鼠杂交,获得RISP KO、RISP KO+AOX、QPC KO等基因型。

2

验证模型功能和代谢状态

确认敲除效率、AOX表达恢复呼吸但不产生ROS。

通过Western blot检测RISP蛋白,qPCR检测AOX mRNA,Seahorse测量OCR和ECAR,代谢组学和NAD/NADH测量评估代谢状态。

3

体外T细胞增殖和记忆形成实验

评估复合物III缺陷对CD8+ T细胞增殖和记忆分化的直接影响。

Cell Trace Violet标记后抗CD3/CD28刺激96小时检测增殖;体外记忆形成实验活化3天后加入IL-15和IL-7培养3天,检测记忆标志物。

4

体内LCMV感染模型

在生理性免疫应答中验证复合物III功能对CD8+ T细胞增殖和分化的影响。

感染LCMV Armstrong或Clone 13,跟踪gp33四聚体阳性细胞,分选记忆细胞进行RNA-seq和流式分析。

5

肿瘤模型评估体内功能

测试线粒体复合物III缺陷CD8+ T细胞在肿瘤微环境中的抗肿瘤功能。

MC38-gp33肿瘤细胞皮下注射,5天后过继转移体外活化的P14细胞,监测肿瘤大小。

6

转录组分析

全局分析基因表达变化,揭示耗竭和记忆相关通路的富集。

对初始、记忆和效应CD8+ T细胞进行RNA-seq,使用GSEA分析转录组,比较耗竭相关基因表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗CD3ε/抗CD28 T细胞扩增磁珠Miltenyi130-093-627
白细胞介素-2NIH repository--
细胞示踪紫Thermo Fisher ScientificC34557
白细胞介素-15和白细胞介素-7----
EasySep小鼠CD8+ T细胞分离试剂盒STEMCELL19853A
EasySep小鼠初始CD8+ T细胞分离试剂盒STEMCELL19858
活/死可固定近红外780染料InvitrogenL34994A
膜联蛋白VInvitrogenV13246
H-2D(b) LCMV gp33-41四聚体NIH Tetramer Core--
寡霉素Sigma-Aldrich75351
水杨基羟肟酸Sigma-AldrichS607
鱼藤素Cayman15379
2-脱氧-D-葡萄糖Sigma-AldrichD8375
海马XF HS小型分析仪Agilent--
抗RISP抗体Abcamab14746
抗纽蛋白抗体CST13901
NP40细胞裂解缓冲液Thermo Fisher ScientificFNN0021
Halt蛋白酶抑制剂混合物Thermo Fisher Scientific78430
Pierce BCA蛋白测定试剂盒Thermo Fisher Scientific23225
ProteinSimple WESBio-Techne--
NAD/NADH-Glo检测PromegaG9071
AllPrep DNA/RNA小型试剂盒QIAGEN--
CYBRFast一步法RT-qPCR Lo-ROX试剂盒Tonbo Biosciences--
SMART-seq v4超低输入RNA试剂盒Takara634773
NEBNext Ultra DNA文库制备试剂盒(Illumina)NEBE7370L
NextSeq500测序仪Illumina--
NextSeq2000测序仪Illumina--
Cellometer K2计数仪Nexcelom--
FACSSymphony或Fortessa流式细胞仪BD Biosciences--
FACS ARIA II分选仪BD Biosciences--
MACS Tyto分选仪Miltenyi--
大鼠抗LCMV核蛋白单克隆抗体(克隆VL-4)BioXCellBED106
山羊抗大鼠IgG2a-FITC二抗BethylA110-109F
MC38-gp33肿瘤细胞----
WT GP33肽(KAVYNFATC)GenScriptRP20257
布雷菲德菌素A溶液BioLegend420601
抗CD107a抗体----
BD细胞固定/破膜试剂BD BiosciencesBDB554714
BioLegend True Nuclear试剂盒BioLegend424401
IncuCyte S3活细胞分析系统Sartorius4647

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
基因修饰小鼠的构建
RISPfl/fl (Uqcrfs1fl/fl)、QPCfl/fl (Uqcrqfl/fl)、AOXLSL等等位基因的组合;Cre品系(CD4-Cre、Gzmb-CreERT2);P14转基因;Thy1.1;Sox2-Cre;他莫昔芬给药方式(饮食)。
阅读提示:Methods: Mice部分
CD8+ T细胞分离和激活
EasySep试剂盒型号;激活用抗CD3/CD28磁珠比例(3:1或1:1);IL-2浓度50 U/ml;刺激时间(96小时、48小时、3天)。
阅读提示:Methods: Cell isolations, in vitro restimulations, flow cytometry and sorting 和 In vitro activation for proliferation and memory formation
Seahorse OCR/ECAR测量
细胞密度100,000细胞/孔;抑制剂浓度(oligomycin 1 μM, antimycin A 500 nM, SHAM 2 mM, piericidin 1 μM);激活时间48小时。
阅读提示:Methods: OCR and ECAR measurements by Seahorse
LCMV感染和过继转移
感染剂量2×10^5 p.f.u. (Armstrong) 或2×10^6 p.f.u. (Clone 13);P14细胞转移数量5×10^4或2500;感染途径i.p.或i.v.。
阅读提示:Methods: Mice, adoptive transfers, infections and tumors
肿瘤模型
MC38-gp33肿瘤细胞数量5×10^5;皮下注射;P14细胞转移数量10^6;肿瘤建立后5天转移。
阅读提示:Methods: Mice, adoptive transfers, infections and tumors