构建条件性敲除和AOX表达小鼠模型
特异性地阻断线粒体复合物III功能并恢复呼吸以区分ROS和呼吸的作用。
使用CD4-Cre、Gzmb-CreERT2等Cre工具与RISPfl/fl或QPCfl/fl及AOXLSL小鼠杂交,获得RISP KO、RISP KO+AOX、QPC KO等基因型。
Mitochondrial respiration is necessary for CD8+ T cell proliferation and cell fate
包含多种遗传修饰小鼠模型(CD4-Cre、Gzmb-CreERT2、P14转基因)、体外激活与增殖实验、体内LCMV感染模型、肿瘤模型、RNA-seq转录组分析及代谢组学检测,多层级验证功能与机制。
CD4-Cre RISPfl/fl AOXLSL小鼠来源的CD8+ T细胞 Gzmb-CreERT2 QPCfl/fl AOXLSL P14转基因CD8+ T细胞 MC38-gp33肿瘤模型 LCMV Armstrong和Clone 13感染模型
线粒体复合物III亚基RISP或QPC的条件性敲除 AOX表达恢复呼吸但不产生ROS CD8+ T细胞增殖依赖于复合物III呼吸功能但非ROS 急性抗原刺激诱导复合物III缺陷细胞表达耗竭标志物 记忆形成需要复合物III来源的ROS
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
特异性地阻断线粒体复合物III功能并恢复呼吸以区分ROS和呼吸的作用。
使用CD4-Cre、Gzmb-CreERT2等Cre工具与RISPfl/fl或QPCfl/fl及AOXLSL小鼠杂交,获得RISP KO、RISP KO+AOX、QPC KO等基因型。
确认敲除效率、AOX表达恢复呼吸但不产生ROS。
通过Western blot检测RISP蛋白,qPCR检测AOX mRNA,Seahorse测量OCR和ECAR,代谢组学和NAD/NADH测量评估代谢状态。
评估复合物III缺陷对CD8+ T细胞增殖和记忆分化的直接影响。
Cell Trace Violet标记后抗CD3/CD28刺激96小时检测增殖;体外记忆形成实验活化3天后加入IL-15和IL-7培养3天,检测记忆标志物。
在生理性免疫应答中验证复合物III功能对CD8+ T细胞增殖和分化的影响。
感染LCMV Armstrong或Clone 13,跟踪gp33四聚体阳性细胞,分选记忆细胞进行RNA-seq和流式分析。
测试线粒体复合物III缺陷CD8+ T细胞在肿瘤微环境中的抗肿瘤功能。
MC38-gp33肿瘤细胞皮下注射,5天后过继转移体外活化的P14细胞,监测肿瘤大小。
全局分析基因表达变化,揭示耗竭和记忆相关通路的富集。
对初始、记忆和效应CD8+ T细胞进行RNA-seq,使用GSEA分析转录组,比较耗竭相关基因表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养和刺激 | 抗CD3ε/抗CD28 T细胞扩增磁珠 | Miltenyi | 130-093-627 |
| 白细胞介素-2 | NIH repository | -- | |
| 细胞示踪紫 | Thermo Fisher Scientific | C34557 | |
| 白细胞介素-15和白细胞介素-7 | -- | -- | |
| 细胞分离 | EasySep小鼠CD8+ T细胞分离试剂盒 | STEMCELL | 19853A |
| EasySep小鼠初始CD8+ T细胞分离试剂盒 | STEMCELL | 19858 | |
| 流式分析 | 活/死可固定近红外780染料 | Invitrogen | L34994A |
| 膜联蛋白V | Invitrogen | V13246 | |
| H-2D(b) LCMV gp33-41四聚体 | NIH Tetramer Core | -- | |
| Seahorse分析 | 寡霉素 | Sigma-Aldrich | 75351 |
| 水杨基羟肟酸 | Sigma-Aldrich | S607 | |
| 鱼藤素 | Cayman | 15379 | |
| 2-脱氧-D-葡萄糖 | Sigma-Aldrich | D8375 | |
| 海马XF HS小型分析仪 | Agilent | -- | |
| Western blot | 抗RISP抗体 | Abcam | ab14746 |
| 抗纽蛋白抗体 | CST | 13901 | |
| 蛋白质定量 | NP40细胞裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | FNN0021 |
| Halt蛋白酶抑制剂混合物 | Thermo Fisher Scientific | 78430 | |
| Pierce BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 | |
| ProteinSimple WES | Bio-Techne | -- | |
| 代谢物测量 | NAD/NADH-Glo检测 | Promega | G9071 |
| RNA提取和RT-PCR | AllPrep DNA/RNA小型试剂盒 | QIAGEN | -- |
| CYBRFast一步法RT-qPCR Lo-ROX试剂盒 | Tonbo Biosciences | -- | |
| RNA-seq文库制备 | SMART-seq v4超低输入RNA试剂盒 | Takara | 634773 |
| NEBNext Ultra DNA文库制备试剂盒(Illumina) | NEB | E7370L | |
| RNA-seq测序 | NextSeq500测序仪 | Illumina | -- |
| NextSeq2000测序仪 | Illumina | -- | |
| 细胞计数 | Cellometer K2计数仪 | Nexcelom | -- |
| 流式细胞术 | FACSSymphony或Fortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞分选 | FACS ARIA II分选仪 | BD Biosciences | -- |
| MACS Tyto分选仪 | Miltenyi | -- | |
| 病毒滴度检测 | 大鼠抗LCMV核蛋白单克隆抗体(克隆VL-4) | BioXCell | BED106 |
| 山羊抗大鼠IgG2a-FITC二抗 | Bethyl | A110-109F | |
| 肿瘤细胞注入 | MC38-gp33肿瘤细胞 | -- | -- |
| 体外刺激 | WT GP33肽(KAVYNFATC) | GenScript | RP20257 |
| 布雷菲德菌素A溶液 | BioLegend | 420601 | |
| 抗CD107a抗体 | -- | -- | |
| 流式细胞术 | BD细胞固定/破膜试剂 | BD Biosciences | BDB554714 |
| BioLegend True Nuclear试剂盒 | BioLegend | 424401 | |
| 病毒滴度检测 | IncuCyte S3活细胞分析系统 | Sartorius | 4647 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 基因修饰小鼠的构建 | RISPfl/fl (Uqcrfs1fl/fl)、QPCfl/fl (Uqcrqfl/fl)、AOXLSL等等位基因的组合;Cre品系(CD4-Cre、Gzmb-CreERT2);P14转基因;Thy1.1;Sox2-Cre;他莫昔芬给药方式(饮食)。 阅读提示:Methods: Mice部分 |
| CD8+ T细胞分离和激活 | EasySep试剂盒型号;激活用抗CD3/CD28磁珠比例(3:1或1:1);IL-2浓度50 U/ml;刺激时间(96小时、48小时、3天)。 阅读提示:Methods: Cell isolations, in vitro restimulations, flow cytometry and sorting 和 In vitro activation for proliferation and memory formation |
| Seahorse OCR/ECAR测量 | 细胞密度100,000细胞/孔;抑制剂浓度(oligomycin 1 μM, antimycin A 500 nM, SHAM 2 mM, piericidin 1 μM);激活时间48小时。 阅读提示:Methods: OCR and ECAR measurements by Seahorse |
| LCMV感染和过继转移 | 感染剂量2×10^5 p.f.u. (Armstrong) 或2×10^6 p.f.u. (Clone 13);P14细胞转移数量5×10^4或2500;感染途径i.p.或i.v.。 阅读提示:Methods: Mice, adoptive transfers, infections and tumors |
| 肿瘤模型 | MC38-gp33肿瘤细胞数量5×10^5;皮下注射;P14细胞转移数量10^6;肿瘤建立后5天转移。 阅读提示:Methods: Mice, adoptive transfers, infections and tumors |