慢病毒包装———架起基因和功能研究的桥梁

腺病毒载体操作手册

   2013-03-18
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各载体用途如下表:

  慢病毒
干扰 pHBAd-U6-GFP,pHBAd-U6-RFP
过表达 pHBAd-CMV-IRES-GFP,
pHBAd-CMV-IRES-RFP
标记示踪 pHBAd-CMV-IRES-GFP,
pHBAd-CMV-IRES-RFP,
pHBAd-U6-GFP,pHBAd-U6-RFP

2) 骨架质粒信息如下:

2、细胞株293A,腺病毒的包装细胞,为贴壁依赖型成上皮样细胞,经培养生长增殖形成单层细胞,生长培养基为DMEM(含10% FBS)。
3、菌株大肠杆菌菌株DH5α。用于扩增腺病毒载体和腺病毒骨架载体质粒。
 

三、包装细胞293A 细胞的培养
(一) 293A 细胞的冻存
293A 细胞来源于一个用作空斑测定的亚克隆,具有易使用和易转染的特性。该细胞株对于高细胞密度很敏感,当细胞超过70%汇合时,一些细胞可能会丢失它们的表 型。若细胞密度持续在70%以下,QBI-293A 细胞则能连续培养3~4 个月维持原有细胞特性。若以购买得到的293A 作为第一代,则30 代内能得到最佳结果。随着传代的次数增加,293A 细胞会出现生长状态下降、突变等。为了防止此类现象的出现,我们需要在开始就对细胞进行大量冻存,以保证实验的稳定性和持续性。在细胞对数生长期进行冻 存,增加细胞复苏成活率。
1、去掉上清液,加入PBS 洗去残留的培养基;
2、加入0.25%的胰酶,消化1~2min 后,镜下观察细胞变圆,细胞间间隙加大时,去除胰酶,加入新鲜培养基吹打混匀,移入离心管中。
3、细胞计数,将细胞全部晃下,加入 3mL 37 ℃ 预热的 10%DMEM,用 10mL 移液管进行吹打,较大力吹打 6-8 次即可,不留死角,之后,将所有细胞吸出,置于15mL 离心管中,取 50ul 混匀后的细胞于 1.5mL eppendorf 管中,加 入 450ul 10% DMEM,即为10 倍稀释,混匀,取 10ul 细胞于计数板中计数。计数板上共 4 大格,每大格 16 小格。计数时,4 大格均计 数,总数除以4(得每大格细胞数),再乘以 10(10 倍稀释),即为实际 n 万/mL 细胞浓度。
4、细胞离心,1000rpm,5min。去掉上清。
5、根据细胞计数结果加入细胞冻存液(70%完全培养基+20%FBS+10%DMSO),重悬细胞,密度为3 x 106 个/ml。
6、分装进细胞冻存管,放入冻存盒中,放入-80℃超低温冰箱。
7、第二天将细胞放于液氮罐中长久保存,并作记录。保存过程中,要不时复苏细胞检测细胞存活率,观察细胞状态等。
(二)293A 细胞的传代
当细胞生长到汇合率达到80%~90%时需要对细胞进行传代操作,以扩大细胞数量,维持细胞良好的生长状态。
1、消化细胞,方法同细胞冻存。
2、细胞离心结束后,加入完全培养基重悬。
3、根据具体情况,将细胞分到10cm 培养皿中,每个培养皿补足到10ml 培养基。
4、将培养皿平稳放回37℃、5%CO2 和95%相对湿度的培养箱中培养。
(三)293A 细胞的复苏
当细胞传代次数过多,细胞状态变差时,或者细胞出现污染事故时,需要丢弃并对最初冻存的细胞进行复苏。
1、设置温度为37~42℃的水浴。
2、查看细胞库记录,根据记录从液氮罐中取出冻存的细胞(需戴上棉手套,防止被冻伤),迅速丢入水浴锅中并快速晃动,尽量在1~2min 内使细胞溶液完全溶解。
3、将细胞溶液转移到15ml 离心管中,并在其中加上1ml 新鲜的完全培养基,混匀后离心,1000rpm,5min。
4、去掉上清,加入5ml 新鲜的完全培养基,混匀沉淀后,转入6cm 培养皿。
5、将培养皿平稳放入37℃、5%CO2 和95%相对湿度的培养箱中培养。
6、第二天观察细胞存活率。给细胞换一下培养基。以后每天观察细胞生长情况。
 

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编辑: snail    来源:丁香园

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