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在使用SF9细胞进行杆状病毒(Baculovirus)转染时,以下是一些需要注意的关键点:
1. 细胞培养条件:确保SF9细胞在转染前处于健康、活跃和适当的生长状态。细胞培养基的配方和培养条件应符合SF9细胞的要求,如适当的培养温度(通常为27-28°C)和培养时间。
2. 转染载体和病毒:选择适当的转染载体(如质粒DNA)和杆状病毒背景,以实现所需的蛋白表达。确保转染载体包含目标基因的正确构建,如适当的启动子、表达标签等。
3. 转染试剂:选择适合SF9细胞的转染试剂。常见的转染试剂包括聚乙烯醇(PEI)和脂质体转染试剂。根据厂家提供的使用说明,按照正确的浓度和比例准备转染试剂。
4. 转染条件和优化:进行转染前,优化转染条件,包括转染试剂和质粒DNA的比例、转染时间和温度等。可进行不同条件的试验,以确定最佳转染条件和获得最佳的蛋白表达效果。
5. 转染操作:在进行转染时,确保操作在无菌条件下进行。使用无菌技术和工具,如层流柜或无菌操作台。同时,注意避免细胞受到机械性损伤或过度处理,以保持细胞的健康状态。
6. 转染后处理:根据实验需求,转染后可能需要进行不同的处理步骤,如细胞培养、蛋白表达的时间点和条件的优化等。根据实验设计,选择适当的处理方式。
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1.细胞静置培养时半贴壁生长,也可以使用摇瓶悬浮培养
2.对温度极为敏感
3.细胞对吹打、气泡等机械损伤敏感
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1. 进行病毒操作时使用专用生物安全柜,避免污染。
2. 必要时可使用病毒感染增强剂来提高病毒感染效率。
3. 在转染后,如果目的细胞系GFP荧光强度弱,可观察293T平行对照组荧光强度,如果293T荧光强度也弱,需要考虑病毒液本身的问题,如果293T荧光强度正常,就需要考虑是不是目的细胞系属于难转染细胞系等其他原因。
4.在转染过程中常常遇到加入病毒液后或者加入Puromycin筛选后细胞状态极差的情况,这个时候细胞通常比较脆弱,在已经确定好病毒液的量或者Puromycin筛选浓度时,多考虑是不是在转染时细胞本身状态不够好。
5.如果加Puromycin后细胞死亡较多,需要及时换液,以防死细胞释放的有害物质影响具有抗性的细胞生长。