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        生物膜结晶紫染色

        相关实验:整装培养细胞生物膜系统的标本制备及观察实验

        user-title

        dxy_w392xx97

        想知道大家做结晶紫定量生物膜的时候,都是用什么固定,是否需要清洗,感觉生物膜很容易被吸走或冲走,我用的是甲醇固定,做了好几次都做不出来,别人都是怎么做出来的啊😭😭😭😭

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        5 个回答

        user-title

        dxy_58wfiw47

        有帮助

        我之前也遇到这样的问题 后来发现清洗完浮游菌后直接放烘箱烘干(15-20分钟即可)效果比用甲醇等固定液效果要好 可以试试看你的菌适不适合这个方法

        user-title

        dxy_w392xx97user-title

        谢谢,下次试试看

        user-title

        balalaLy

        有帮助

        用甲醇或者甲醛都可以,要视染色的情况看需不需要洗。洗的时候操作要轻柔。

        user-title

        土井挞克树

        有帮助

        我一般是用10%的甲醇固定,然后pbs洗涤一次,不需要洗涤太多次。

        user-title

        z流沙z

        有帮助

        我们实验室用的4%的多聚甲醛固定,是要冲洗的,轻柔一点,另外可以用细胞爬片,细胞粘附的更好

        user-title

        loveliufudan

        有帮助

        以下是一些常见的方法和建议:

        固定方法:甲醇固定可以用来固定细胞和蛋白质等生物样本,但可能不适用于所有类型的生物膜。一些研究者使用其他的固定剂,如琼脂和乙醛。最好在试验前仔细阅读文献和厂家说明书,了解所使用的固定剂的最佳用法。

        清洗:在染色之前,一定要充分地清洗生物膜,以去除任何可能影响染色结果的物质。使用去离子水或PBS等缓冲液反复清洗生物膜。

        避免过度洗涤:虽然清洗生物膜很重要,但过度洗涤也会使生物膜变薄或冲走。最好在清洗时避免太过强烈的水流和洗涤时间过长。

        确保染色剂充分染色:染色剂与生物膜接触的时间和浓度是非常重要的。如果染色时间太短或浓度太低,生物膜可能不会被充分染色。

        重复实验:如果实验重复多次,但结果不一致,那么需要重新检查所有步骤,看是否有任何变化或错误。

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