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        提小鼠原代肺成纤维细胞三个月 一直是长着长着细胞就死了

        相关实验:🔥 原代细胞培养实验

        user-title

        是韩小白

        组织块贴壁:该传代的时候遭遇了培养箱污染 卒

        消化加贴壁:用15%小牛血清的DMEM培基,细胞一直长不上来

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        4 个回答

        user-title

        dxy_akl94p36

        有帮助

        您好,可以分享一下提小鼠原代肺成纤维细胞的protocol吗?

        user-title

        bamboopiggy

        有帮助

        照理说成纤维细胞还是比较好养的,你换胎牛血清试试,并且原代细胞,你养三个月作什么?直接实验不好么?

        user-title

        Eason老歌迷

        有帮助

        你可以试试以下方法:

        1. 配制0.25%的胰酶,-20度冻存,用时取出,37度水浴温浴。然后将其pH

        值调至7.0左右,因为胰酶在碱性环境中,消化作用最强。

        2. 取出细胞把原液倒出,用D-Hanks洗2/3次以去除残留的血清等抑制胰酶消

        化的因素,加2-3ml经预热的0.25%的胰酶。轻轻晃动瓶子,使瓶中细胞都

        能接触倒胰酶。倒置显微镜下观察,如果见到细胞变圆,间隙增大(时

        间约为2分钟)时,倒掉胰酶,用D-Hanks洗2/3次(或直接加入含血清的

        培养基以终止消化),加入2ml左右的含血清培养基,用吸管轻轻的吹打

        瓶壁致使细胞成单个悬浮细胞(你可以镜下观察细胞消化程度。注意吹

        打不 要太用力,也不要吹打时间过长,这样会使细胞破碎,死亡。)

        3. 根据你原始细胞的致密程度和你的需要按1:2;1:3或1:4传代。然后

        放置5%的CO2孵育箱中培养。平均2-3天换一次液。传够一定数量,进行

        冻存。

        4. 对于你所述的胰酶浓度和消化时间以及吹打时间,你需要考虑。

        user-title

        未来9

        有帮助

        需要规范操作,避免污染;

        改善培养基,使用比较好的培养基再试试

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