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        无菌感染期线虫的诱导培养

        互联网

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        实验试剂

         

        1. 琼脂糖(Agarose),进口分装,上海Yito公司;

        2. 胰蛋白胨(bacto-tryptone)、酵母浸出粉(bacto-yeast extract),英国OXOID公司;

        3. 琼脂粉,广东环凯微生物科技公司;

        4. DEPC,Bio Basic inc公司;

        5. LB培养基

        Tryptone                     10 g

        Yeast Extract                5 g

        NaCl                           10 g

        pH                              7.2

        加水至1000 mL(固体培养基加1.8%琼脂粉);

        6. 80%甘油:称取100.8 g甘油(密度为1.26 g/cc)于20 mL 双蒸水中,高压灭菌15 min,室温保存。

        实验设备

         

        1. MDF-192型超低温冰箱,日本三洋电机株式会社;

        2. CF43S超净工作台,Gelman公司;

        3. 高速冷冻台式离心机,Heraeus Sepatech公司;

        4. THZ-C恒温振荡器,广州市深华生物技术公司;

        5. BL150S型电子天平,德国Sartorius公司;

        6. GB 1302型天平,Mettler-Toledo仪器(上海)有限公司;

        7. C-90-1型电热恒温水浴锅,广州市越秀区医疗器械厂;

        8. 微波炉,日本Sharp;

        9. YXQ.WY21-600IIR卧式高压蒸汽消毒器,广州市医疗设备厂;

        10. XSZ-D2型倒置显微镜,重庆光学仪器厂。

        实验材料

         

        1. 小卷蛾斯氏线虫 S. carpocapsae A24品系;

        2. 共生细菌X. poinarii RS92品系。

        实验步骤

         

        1. 单菌线虫S. carpocapsae A24的培养

        参照Han et al. (1990)[1] 和韩日畴(1995)[2] 建立的方法,将无菌S. carpocapsae 的A24品系与X. poinarii 的RS92 共生细菌菌株建立单菌组合(RS A)并用人工培养基进行体外培养[3,4] 。人工培养基成分为1%蛋白胨,1%牛肉浸膏,20%鸡蛋,15%豆粉,5%猪油,8%聚乙醚氨基甲酸酯海绵和50%无离子水[93] 。培养温度25℃。

        2. 无菌感染期线虫S. carpocapsae A24的获得

        上述线虫培养30天后,进行体表消毒,即可获得无菌感染期线虫。具体方法如下:

           1)     将培养好的RS A组合的线虫培养基倒入已消毒的带滤布及筛网的不锈钢盆内,加无菌水室温浸泡约3 h,浸泡时以不锈钢盆盖住,以防止飞虫的污染。大部分感染期线虫将从海绵培养基中爬出,穿过滤布沉淀于容器底部;

           2)     移去滤布、筛网和网内的海绵及培养基等杂质,静沉后,倾去上层液, 加入无菌水清洗线虫6~7次,每次约15 min;

           3)     将线虫液转入三角瓶中,以0.5%硫酸链霉素室温,100 rpm,振荡消毒6h,以保证抗菌素充分接触线虫;

           4)     用无菌水清洗线虫6~7次,再用无菌乐百氏水清洗线虫至少2次,每次约15 min;

           5)     最后得到无菌的感染期线虫悬液100 mL~200 mL,稀释到一定浓度,分装若干瓶;

           6)     取样计数,计算出每毫升悬液中的线虫含量,于4℃摇床中保存;

           7)     取200 μL线虫悬液滴入100 mL LB培养基中,100 rpm振荡,检测带菌情况。取少量线虫液滴到LB平板上,检测带菌情况。

        3. 无菌感染期线虫A24的诱导

           1)     取-80℃共生细菌 X. nematophila A24 甘油储存菌20 μL于200 mL在LB平板上划线,25℃,培养48 h;

           2)     从LB平板上挑取单菌落接种至4 mL LB液体培养基中,25℃,200 rpm,振荡培养36 h。将活化菌按3%接种量转接至200 mL培养基中,振荡培养36 h;

           3)     将菌培养液置于15 mL无菌的离心管中,4℃下,6000 rpm 离心15 min;

           4)     取上清,细菌过滤器除菌到无菌烧杯中,混匀;

           5)     于6#细胞培养板中,分别加入3 mL菌过滤液,再加入100 μL无菌感染期线虫,25℃约100 rpm下诱导恢复10 h;

           6)     同样的操作,用Ringer’s 溶液作对照;

           7)     将处理的线虫吸到经DEPC水处理过的无菌离心管中,离心(25℃,2000 rpm,1 min),吸弃上清;

           8)     加适量的0.2%DEPC水清洗线虫,离心(25℃,2000 rpm,1 min),重复清洗4次;

           9)     将清洗最后一次的线虫转入已称量的无菌离心管内,再称量算得线虫的体积,将离心管放入烧杯,加液氮,-80℃贮存。

         

        参考文献:

        1. Han R C, Wouts W M, Li L Y. Development of Heterorhabditis spp. strains as characteristic of possible Xenorhabdus luminescens subspecies[J]. Rev. Nematol . 1990, 13: 411~415.

        2. 韩日畴. 昆虫病原线虫大量培养系统的优化管理(D). 华南农业大学博士研究生毕业论文,1995.

        3. Bedding R A. Low cost in vitro mass production of Neoaplectana and Heterorhabditis species (Nematoda) for field control of insect pests[J]. Nematologica. 1981, 27: 109~144.

        4. Wouts W M. Mass production of entomogenous nematode Heterorhabditis heliothidis (Nematoda:Heterorhabditidae) on artificial media[J]. Journal of Nematology. 1981, 13: 467~469.

         

         

         

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