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        小鼠心脏灌流解离制备高质量心肌细胞

        相关实验:胚胎干细胞向心肌细胞的分化实验

        最新修订时间:

        原理

        借助 gentleMACS 灌流技术,可在 gentleMACS Octo 八通道带加热全自动组织解离器上完成小鼠心脏的原位灌流。灌流过程中,心脏灌流试剂盒中的酶组合降解细胞外基质,破坏组织完整性。随后将灌流后的心脏转入 gentleMACS C 管,经短暂机械解离,即可得到高活性的单细胞悬液。最后通过 MACS SmartStrainer 100 μm 过滤,去除残余组织块,所得细胞可立即用于下游实验(分选、培养、功能/分子分析)。

        材料与仪器

        材料:小鼠新鲜心脏

        试剂:

        小鼠心脏灌流试剂盒(130-134-266)

        MACS BSA 缓冲液 (130-091-376)

        肌球蛋白Ⅱ抑制剂,如 2,3-丁二酮单肟 (BDM)

        (可选)MACS 组织保存液(130-100-008)

        仪器与耗材:

        gentleMACS Octo 八通道带加热全自动组织解离器(130-134-029)

        gentleMACS 灌流套筒(gentleMACS Perfusion Sleeve,130-128-752)

        gentleMACS 灌流管 2(gentleMACS Perfusers 2,130-134-803)

        gentleMACS C 管(130-093-237)

        MACS SmartStrainer 细胞滤筛,100 μm (130-098-463)

        细长玻璃 Pasteur 吸管(230 mm)、一次性吸液泵

        恒温水浴锅、冷却离心机

        6 cm 培养皿,15 mL / 50 mL 离心管,眼科手术器械

        小鼠心脏灌流解离制备高质量心肌细胞

        Perfusers 2 结构示意图如图所示,详细组装操作可点击下方图片查看视频教学

        小鼠心脏灌流解离制备高质量心肌细胞

        小鼠原代心肌细胞离体灌注分离

         

        步骤

        1. 试剂配制:

        所有体积均以单次灌流计算;如需多次,按比例放大。

        (1)复溶缓冲液(Reconstitution Buffer)

        取 500 μL Buffer H (20×) + 9.5 mL 无菌水 → 10 mL

        加入 1 μL Reagent C,混匀备用。

        注:Buffer H(20×)易滋生细菌,建议无菌分装。首次使用前,请将 Buffer H(20×)置于 37 °C 预热至少 45 分钟,且使用前充分摇匀 Buffer H(20×)。

        (2)酶复溶

        小鼠心脏灌流解离制备高质量心肌细胞

        所有复溶酶液 –20 °C 保存 6 个月,使用前轻柔颠倒混匀。

        (3)缓冲液体系

        小鼠心脏灌流解离制备高质量心肌细胞

        BDM 配制:0.2 g BDM + 4 mL Buffer H (1×),37 °C 水浴 10–20 min,每 5  min 摇晃一次,直至完全溶解。

        (4)酶消化混合液(Enzyme Digestion Mix,现配现用)

        一个单位灌流用量:6 mL 预热的 Equilibration Buffer + 200 μL Enzyme D + 65 μL Enzyme T + 10 μL Enzyme A,轻柔颠倒混匀,避免气泡。

         

        2. 心脏灌流解离

        (1)全程建议不间断操作。如需短暂转运,至少完成步骤 1–10(心脏结扎并离体),然后置于 4 °C MACS 组织保存液 + Reagent E (1:200) 中运输;延迟处理会降低细胞得率与活性。仅完整小鼠心脏可灌流,操作前切勿损伤心脏。

        (2)gentleMACS Perfuser 2  已预设好小鼠心脏灌注参数。
          若调节器(adjuster)位置被误调,可按以下方法复位:
          2.1. 顺时针旋到底(最低位);
          2.2. 稍回旋,使调节器刻度上的「5」对准箭头;
          2.3. 再逆时针旋转 720°(两圈)即可。

        ▲ 在连接 gentleMACS Perfuser 2 之前,请确认已将 常规 gentleMACS 套筒 更换为 灌注专用套筒(Perfusion Sleeve

        (3)仪器准备

               3.1 水浴 37 °C 预热;离心机预冷至 4 °C。

               3.2 预热:Pre-digestion Buffer、两管 Equilibration Buffer 于 37 °C 预热。

               3.3 将 Perfuser 2  的底座+ 盖子-夹子-格栅组件安装于 Perfusion Sleeve,确保调节器在正确位置。

               3.4 将一个加热模块  Heating Unit  置于安装好  perfuser 2  的解离通道上(安装加热模块时,切勿在未安装盖子的情况下将底座装到通道上,否则可能导致加热单元故障。)。

               3.5 用 Luer 头吸管将 8 mL 预热 Pre-digestion Buffer 转入 Perfuser 2。

               3.6 启动 gentleMACS 程序 37C_m_HPK_1(步骤见下表)。

        小鼠心脏灌流解离制备高质量心肌细胞

        注:缓冲需液更换, 程序每阶段后会暂停;用细长玻璃吸管 + 吸液泵手动吸弃旧液,再加新液,点击 Resume 继续。

        (4)心脏手术与安装

                4.1 取下盖子-夹子-格栅组件,置于 6 cm 培养皿。

                4.2 剪约 15 cm 手术线,打一环,环径略大于心脏。

                4.3 安乐死:遵守 AVMA 指南(30–70 % CO₂)。开胸,固定肋骨,剥离心包。

                4.4 将线圈套过心脏,用弯镊将其置于心房后方,轻提心脏,拉紧线结结扎,剪去多余线头。

                4.5 将心脏置于格栅中央,左右心室分别朝向格栅两侧。

                4.6 压下夹子,使心脏固定于 grid 与夹具之间。

                4.7 将盖子-夹子-格栅组件重新装回 Perfuser 2 底座。

                4.8 缓慢逆时针旋转盖子直至「▼」对准底座「▼」,lid 下沉。

                4.9 顺时针旋紧,使「▼」对准「▲」,锁定 Perfuser 2。

                4.10 点击Resume继续Initial perfusion;立即逆时针旋转调节器一整圈(约 360°)。

                4.11 Washing阶段:程序自动暂停 3 次,每次手动吸弃旧液,加入 8 mL 新鲜 Pre-digestion Buffer,再 Resume。

                4.12 最后一次洗涤后,吸弃 Pre-digestion Buffer,加入 8 mL Equilibration Buffer。

                4.13 Resume → Equilibration 30 s。

                4.14 Equilibration 期间,按前文配制酶消化混合液 Enzyme Digestion Mix(6 mL)。

                4.15 Equilibration 结束后,吸弃缓冲液,加入 6 mL 酶消化混合液。

                4.16 Resume → Enzymatic perfusion 15 min。
                        ▲ 程序结束后勿丢弃该酶消化混合液,后续步骤需再次使用。

         

        3. 组织转移与机械解离

        (1)取下加热模块,连同 Perfuser 2 一并取下。

        (2)旋开盖子,将盖子-夹子-格栅组件置于培养皿。

        (3)将前面步骤从底座中收集的用过的酶消化混合液倒入 gentleMACS C 管(留作后续解离液),弃底座。

        (4)用镊子推起夹子,将心脏从格栅移至培养皿。

        (5)丢弃盖子及夹子-格栅组件。

        (6)去除心脏上缝线,将心脏转入装有用过的酶消化混合液的 C 管。

        (7)拧紧 C 管盖子,将其倒置插入 gentleMACS 解离通道中

        ▲此处确保通道安装的是常规的套筒(Sleeve)而不是灌流套筒(Perfusion Sleeve)

        (8)运行程序 HPK_CR_1(以孵育为主,极少旋转)。

        ▲ 手动机械法解离会降低细胞得率及活性。

         

        4. 过滤、收集与终止

        (1)取 15 mL 离心管置冰上,顶部放 100 μm 细胞滤筛。

        (2)程序结束后取下 C 管。

        (3)开盖,将细胞悬液转移至滤网,避免产生气泡。

        (4)用 4 mL Stop Buffer冲洗 C 管,一并倒入滤筛。

        (5)4 °C,140 × g,离心 1 min,完全弃上清(上清可进一步富集非实质细胞)。

        (6)轻弹管壁使沉淀松散。

        (7)用 5 mL Stop Buffer 重悬细胞,轻柔颠倒混匀。

        (8)置于冰上,立即进行下游实验。

         

        来源:丁香实验

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