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        气管导管相关性细菌生物膜感染动物模型的建立

        相关实验:气管导管相关性细菌生物膜感染动物模型

        最新修订时间:

        简介

        目前,气管导管相关性生物被膜感染动物模型主要有以下两种:一是将灭菌的导管插入气管后,将一定量菌液通过导管注入肺内;另一种是将带菌的导管经口插入气管,留置导管于气管内。常用的实验动物有家兔、大鼠。

        材料与仪器

        器材:

        常规手术器械一套、导管、一次性输液器。

        试剂:

        ①菌种;②培养基;③麻醉药(水合氯醛);④无菌生理盐水。

        步骤

        静脉置管法建立静脉置管感染动物模型的造模方法分有无导管两类,具体步骤如下:

        (一)菌液通过天菌导管注入肺内

        A、挑取铜绿假单胞菌临床分离株单菌落接种于 L-Broth 培养液中,37 ℃、200 r/min 振荡培养过夜。

        B、分光光度计测定菌液 OD 值,调整 OD 值至 0.5。

        C、取 10% 水合氯醛 0.3 mL/100 g 麻醉大鼠,固定大鼠四肢和头,将颌下至两前腿之间的皮毛剪掉,用碘酒从中间向外周消毒,再用乙醇脱碘。

        D、用镊子提起皮肤,用小剪刀剪开一个小口,再在消毒范围的正中,从颌下至胸部剪一个长约 1.5 cm 的小口。用剪刀剪开浅筋膜,直至暴露肌肉,用弯钳从中央钝性分离肌肉直至暴露气管。

        E、分离气管周围组织,将小管垫放到气管下,用小剪刀垂直剪开气管一个长约 0.5 cm 的小口,将灭菌导管放入气管内,再用小缝线针穿过气管切口远端最近的软骨间肌肉,并穿过导管,从切口近段最远的软骨间肌肉穿出。先拉紧缝线,观察大鼠呼吸情况,如平稳即可结扎。

        F、将菌液通过导管缓慢注入肺内,然后将皮下组织理顺盖好,将皮肤缝合后用乙醇消毒伤口。

        G、在不同时间点处死大鼠取出导管研究肺部变化。

        (二)长有生物膜的导管留置气管

        A、挑取铜绿假单胞菌临床分离株单菌落接种于 L-Broth 培养液中,37 ℃、200 r/min 振荡培养过夜。

        B、分光光度计测定菌液 OD 值,调整 OD 值至 0.5。

        C、接种菌液于预先放置无菌导管 (约 l cm,作为 BF 生长的载体) 的 24 孔细胞培养板中,每孔 1 mL,隔日换液,7 天后得到成熟 BF。

        D、取 10% 水合氯醛 03 mL/100 g 麻醉大鼠。固定大鼠四肢和头,将颌下至两前腿之间的皮毛剪掉,用碘酒从中间向外周消毒,再用乙醇脱碘。

        E、用镊子提起皮肤,用小剪刀剪开一个小口,再在消毒范围的正中,从颌下至胸部剪一个长约 1.5 cm 的小口。用剪刀剪开浅筋膜,直至暴露肌肉,用弯钳从中央钝性分离肌肉直至暴露气管。

        F、分离气管周围组织,将小管垫放到气管下,用小剪刀垂直剪开气管一个长约 0.5 cm 的小口,将长有 BF 的导管放入气管内,再用小缝线针穿过气管切口远端最近的软骨间肌肉,并穿过导管,从切口近段最远的软骨间肌肉穿出。先拉紧缝线,观察大鼠呼吸情况. 如平稳即可结扎。

        G、将皮下组织理顺盖好,将皮肤缝合后用乙醇消毒伤口。在不同时间点处死大鼠取出导管,研究肺部变化。

        来源:丁香实验

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