材料与仪器
步骤
基 本 方 案 1 流感病毒鼻腔内感染麻醉的小鼠
这种方法可以建立所有呼吸道感染(鼻 、气管、肺)。
材料
6〜8 周 龄 小 鼠(如 B A L B /c)
I X l O 2〜I X l O 5 T CID5()/m l 流 感 病 毒(见辅助方案 2 和 4 滴定)
1 . 安全固定 6〜8 周 龄 小 鼠(附 录 2 0 , 氯胺酮/赛 拉 嗪 麻 醉(附 录 2D )。
如 果 实 验 需 要 定 量 测 定 肺 脏 病 毒 滴 度 ,应 避 免 使 用 吸 入 麻 醉 剂 , 因 为 它 们 对 纤毛 的 抑 制 作 用 影 响 病 毒 的 清 除 。
2 . 捏住麻醉小鼠的背部使其头部向后倾斜,鼻 腔 向 上(目的是暴露鼻腔,使病毒更稳定地进入呼吸道)。应用移液管每侧鼻孔滴入 IOul I X I O 2〜IX I O 5T C I D 50/m l 流感病
毒 。保持小鼠此体位 15s,使病毒进入肺内。
3 . 将小鼠腹部置于温暖的地方使其恢复。
流 感 病 毒 可 在 同 一 笼 内 鼠 与 鼠 间 传 播 。 一 般 同 一 实 验 组 的 小 鼠 可 在 同 一 笼 内 饲养 。应 用 这 种 方 法 使 小 鼠 互 相 感 染 , 同 时 增 强 了 病 毒 的 毒 力(见 基 本 方 案 2 ) 。
4 . 保存一份病毒样本以确定其滴度(见辅助方案 2)。
备 选 方 案 流 感 病 毒 鼻 腔 内 感 染 未 麻 醉 小 鼠
用这种方法,最初的感染仅限于上呼吸道,病毒将于 3〜5d 内播散到气管及肺。
材 料 见 基 础 方 案 1
1 . 安全抓取和控制 6〜8 周 龄 小 鼠(附 录 2D ) ,防止其干扰操作。
2 . 捏住小鼠的背项部使其头部向后倾斜,鼻 腔 向 上(目的是暴露鼻腔,使病毒更稳定地进入鼻内)。应用移液管缓慢向两侧鼻孔滴入 I X IO2〜I X IO5T C I D 50/m l 流感病毒
1 〇 ul, 使小鼠能将病毒充分地吸入到鼻腔内,然后再感染下一只小鼠。
在 进 行 鼻 腔 内 感 染 时 两 人 合 作 明 显 比 一 人 有 效 ,一 人 抓 取 并 固 定 小 鼠 , 另一 人操 控 病 原 滴 注 。
辅 助 方 案 1 流感病毒在鸡胚中扩增
材料
9〜lld、无特异性致病原感染的鸡胚(SPA F A S 或 H y -Vac)5000U /5 mg/ml (分别)青/链霉素溶液
I X IO3T C I D 50/ m l 流感病毒原液

![囊液并非无菌,可将收集的上清液用〇 .45Mm 滤器过滤。 4°C 储存几周或将一部分 移 入 I m l 冷冻管内一70°C 储藏几年。 每次生产较多量病毒液以确保每批实验用的病毒稳定一致,每个冷冻/融化循 环将降低0 •5〜1 个对数级的滴度。 11.通 过 滴 定 确 定 血 凝 素 单 位 (H A U ; 见 辅 助 方 案 9 ) 和 5 0 % 培 养 组 织 感 染 剂 量 (T C I D 5。;见辅助方案4) 辅 助 方 案 2 鸡胚尿囊液内流感病毒滴度的测定 材料 5 % (W T ) FBS 的 D M E M (D M E M -5, Clonetics) 含 50/xg/ml 庆 大 霉 素 , lOOU/ml青霉素, 100]Lig/ml链霉素和2. 5]Lig/ml两性霉素 待 检 液 (如组织匀浆,尿囊液;见辅助方案1) 2.5X 105 M D C K 细 胞 (A T C C # C C L -34;见辅助方案 3) 0.0002% (m A O 胰 蛋 白 酶 /D M E M 含 50Mg/m l 庆 大 霉 素 , 100U /m l 青 霉 素 , 100Mg/m l 链霉素和2. 5Mg/m l 两性霉素 新鲜配制含0.5% (V /V ) 鸡红细胞无菌P B S 悬 液 (见辅助方案7 ,步 骤 1〜3) 已 知 滴 度 流 感 病 毒 (如 A /PortChalmers/73, A T C C # V R -810; A /P R /8/34, A T C C # V R -95) 9 6 孔圆底组织培养用平板,带盖、无菌 多通道移液器 35°C , 5 % C 0 2培养箱 组 织 匀 裝 器 (Fisher Scientific) 1•对每个待测样品, 9 6 孔组织培养板A 〜G 行 相 邻 3 列每孔加90M1D M E M -5。 H 行每 孔 加 IOOmI (阴性对照)。每个平板上包含3 列阳性对照。 2•对样品, A 行 3 个 孔 ,每 孔 加 IOm I 组织勻浆。多通道移液器混合8〜1 0 次 ,然后从 每孔转移IOfd至 B 行相应的孔内,再次混合,换掉移液器枪头后,再次转移相同剂 量 直 至 G 行 。 G 行每孔移走并丢弃10M1。对于阳性对照,加入病毒原液稀释液。 3 . 加 100/xl2.5X 105 M D C K 细 胞 至微滴定板所有孔内。盖 上 盖 子 ,置 于 湿 化 35°C , 5%〇 }2培养箱内过夜。 4 . 用多通道移液器吸走培养液。为避免更换移液器枪头,从 阴 性 对 照 (H 行)开始随 浓度增加直至A 行 ,保持移液器枪头成一直线,使它们可用于处理同一样本。 5•加 200iu l D M E M /0•0002%(m /V ) 胰 蛋 白 酶 (含抗生素)至微量板所有孔内。置于 35°C , 5 % C 0 2培养箱内培养4d 。 6 . 加 50M1 P B S 配制的鸡红细胞悬液至所有孔内。 4°C孵 育 lh,识别并记录每个样品的 凝 集 样 式 (含有病毒的孔内红细胞凝集并呈现混浊状,不含病毒的孔内红细胞沉 淀于孔底)。根 据 公 式 (见 辅 助 方 案 4 ) 计 算 每 个 样 品 5 0 % 培 养 组 织 感 染 剂 量 (Tcro50) o](http://img.dxycdn.com/trademd/upload/userfiles/image/2016/07/B1469762880800v7sqevt2yvpng_small.jpg)

![表 1 1 . 6 . 1 计 算 TCIDS。样表 A B C D E F G 病毒稀释度 凝集孔 非凝集孔 累积的凝集孔 (B 列总和) 累积的非凝集孔 (C 列总和) 累积的凝集率 BD/CD+E) 凝集孔累积 10- 1 5 0 31 0 31/31 100% 10-2 5 0 26 0 26/26 100% 10-3 5 0 21 0 21/21 100% 10-4 5 0 16 0 16/16 100% 10-5 5 0 11 0 11/11 100% 10-6 4 1 6 1 6/7 86% 10-7 2 3 2 4 2/6 33% 10—8 0 5 0 9 0/9 0% 6•为确定 T C I D 5q先计算离散比 P D (proportion distance) : P D — _____ (% above T C I D 50) — 5 0 % _______ (% above T C I D 50) — (% below T C I D 50) 从 表 11. 6. I 中数据可得: 8 6 % - 5 0 % 8 6 % - 3 3 % = 0• 68 7 . 根据公式计算T C I D 5。对数值: (高 于 T C I D 5。稀释倍数的对数值) + ( P D X 稀释因子) = T C I D 5q对数值 本 例 3 个数值分别为一6、 0.68和一1: (—6) + [0•68 X (— 1. 0)] = —6. 68 稀释终点即为1C T6’68。这个数值的倒数表示感染单位体积的病毒效价。由于接种体 积 为 10W ,所以病毒效价可表示为106’68 T C I D 5J O .O l m l 或 W T C I D 5Q/m l 。 辅助方案5 小 鼠 5 0 % 致 死 剂 量 (M L D 5O) 和小鼠5 0 % 感 染 剂 量 (M I D so) 的测定 小 鼠 可 在 清 醒 (见 备 选 方 案 )及 麻 醉 (见 基 本 方 案 1 ) 状 态 下 进 行 鼻 内 接 种 。 M L D 5O和 M I D 5。的数值与小鼠的品系、鼠龄及感染前是否麻醉有关。 材 料 (带V 项 目 见 附 录 1) 滴定用流感病毒原液(见辅助方案4) 小 鼠 (如 B A L B /c, 6〜8 周龄) 无 菌 P B S 配 制 的 10m g /0. 4m g / m l 氯胺酮/赛啦曝麻醉液 V P B S , 无菌 1 . 确定分析T C I D 5。所用流感 病 毒 滴 度 (见辅助方案2 或 4) 2 . 用无 菌 P B S 配 制 的 10m g /0. 4m g /m l 氯胺酮/赛啦嗪麻醉液麻醉小鼠,每 组 4 只 ,用 P B S 稀释的含有0 (仅 为 P B S ,阴性对照)、 1、 IO1、 IO2、 IO3、 IO4和 IO5 TCI D 50的](http://img.dxycdn.com/trademd/upload/userfiles/image/2016/07/B1469762910406tgfpbmebdspng_small.jpg)




![阴 性 对 照 孔 (不含抗流感病毒抗体的正常小鼠血清)会 出现 混 浊 ,因为流感病 毒 使 C R B C 完全凝集。阳 性 对 照 孔 (含有已知抗流感病毒血清) 出 现 C R B C 沉淀类 似 于 H 行沉淀,因为有足够的抗流感病毒抗体可以抑制凝集反应。随着血清稀释度 的增加,抗体逐渐减少, C R B C 凝集逐渐变得明显。 B S A 偶尔会引起干扰;如出现干扰,介质中可不用B S A 。 9 . 将完全抑制凝集反应的最大稀释度作为每列的终点(一系列稀释度中最后一个形成 C R B C 沉淀的孔)。计算每一样品的H A I 滴度。如果多个重复组的滴度差异高于1〜 2 倍稀释度,须重新滴定。 辅 助 方 案 9 流 感 病 毒 储 存 液 (原 液 )的系列稀释 材 料 (带 V 项 目 见 附 录 1) 已滴定的流感病毒原液(见辅助方案2 和 4) V 无 菌 PBS 15m l 无菌圆锥管 注 : 本例我们随意选取了浓度为I O U 1的病毒原液。 1 . 将 1 0 7,31的 病 毒 原 液 加 入 含 P B S 的 1 5 m l 无 菌 离 心 管 内 完 成 1 •• 2 0 . 4 的 稀 释 (即 0• 5 m l病毒原液加入至 9. 7 ml P B S 内),可以得到 IO6 T C ID 5OAOiU l病毒液。 2 . 取 6 只 标 记 的 15m l 无菌圆锥管,每 只 含 有 9m l P B S 。取 Iml IO6T C I D 5。病毒液加入 离心管内并振荡,所得样品为l〇5T C I D 5。。 3 . 重复上述操作得到一系列稀释浓度直至1〇 2。单 独 加 P B S 至 剩 余 管 内 (0 T C I D 5。)。 基本方案2 从脾脏前体细胞获得流感病毒特异性的细胞毒T淋巴细胞(CTL) 材 料 (带 V 项 目 见 附 录 1) 感染流感病毒A 的 B A L B /c 小 鼠 6〜8 周 龄 (见基本方案1 或备选方案) 感染流感病毒B 的 B A L B /c 小 鼠 6〜8 周龄 V 无 菌 I3BS 10%?33的1!^〇]\/1〇 7\〇 (1^〇]\4-10)含有50/^/〇 11庆大霉素, 1001;/1111青霉 素 , 100Mg/m l 链霉素, 2. 5iug/m l 两性霉素和50Mmol/L 2-巯基乙醇 尿囊液内1〇 9 丁 0 ^ 5〇 113见流感病毒八(如8/1沈/40; 八丁丁(:#乂 [101)(见 辅 助 方 案 1, 2 , 4) 无菌玻璃组织匀浆机(Fischer Scientific) 75cm2组织培养瓶 15m l 和 50m l 无菌聚丙烯圆锥管 D P R -6000离心机、 253转子或相当的台式离心机 37°C , 5 % C 〇 2培养箱 1 . 通过注射2 倍麻醉剂量的氯胺酮/赛 啦 嗪 麻 醉 液 (附 录 2D ) 处死感染流感病毒A 的 恢复期小鼠,同样方法处死感染流感病毒B 或模拟感染的小鼠。](http://img.dxycdn.com/trademd/upload/userfiles/image/2016/07/B1469762982050jbc4j9p3kjpng_small.jpg)



来源:丁香实验




