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        光学及荧光显微术

        相关实验:细胞死亡的形态学评价实验

        最新修订时间:

        材料与仪器

        步骤

        一、旋转细胞制备的 Lenkostat 染色

        1. 在转瓶小室中加入 100 μl 细胞悬液,500 r/min 离心 2 分钟。载玻片风干至少 5 分钟。

        2. 在 Lenkostat 固定液中固定细胞 10 秒:2 mg/ml 孔雀石绿溶于 100% 甲醇。可滴去。

        3. 载玻片在 Lenkostat 溶液 1 中浸 10 秒钟使细胞质染色:0.1% 依红;0.1% 甲醛;0.4% 磷酸氢二钠;0.5% 磷酸二氢钾。可用纸巾吸干。

        4. 载玻片在 Lenkostat 溶液 2 中浸 10 秒复染细胞质:0.04% 亚甲蓝;0.04% 天青 A;0.4% 磷酸氢二钠;0.5% 磷酸二氢钾。冲去多余染料,风干载玻片。

        5. 在光学显微镜下观察确定是否获得了所需染色。如是,可用 Pemount 制作载玻片标本。

        6. 如要测定凋亡数量,应放大 40 倍观察。至少应分析包括约 100 个细胞的 3 个视野,给出凋亡和坏死的百分率。

        二、悬浮细胞 Hoechst 33258 染色

        1. 用 1 μl Hoechst 33258 孵育 100 μl 悬浮细胞 10 分钟。

        2. 样品加入转瓶小室中,500 r/min 离心 2 分钟,空气干燥后在细胞上加盖玻片,以减小光衍射,用装备有 DAPI 滤光片的荧光显微镜计数至少 300 个细胞,使用 60 倍物镜。

        三、吖啶橙/溴化乙锭(AO/EB)染色

        1. 用 1 μl AO/EB 溶液孵育 25 μl 悬浮细胞。轻轻混合。每个样品显微定量前应混合。样品必须立即测评。

        2. 置 10 μl 悬浮细胞于显微载玻片上,加盖玻片,用装有荧光滤光片、60 倍物镜的荧光显微镜检测至少 300 个细胞。

        来源:丁香实验

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