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        结肠隐窝的分离和培养实验

        相关实验:结肠隐窝的分离和培养实验

        最新修订时间:

        原理

        用胶原蛋 A 酶 和 dispase 消化切碎的组织块,然后用山梨糖醇分离隐窝。

        材料与仪器

        步骤

        材料

        无菌

        1. HBSS/PSG: 添加 lOOU/ml 青霉素、3ug/ml 链霉素和 25ug/ml 庆大霉素的 HBSS。
        2. 消化混合液:含有 150U/ml XI 型胶原酶、40ug/ml dispase 和 1% FBS,用 DMEM 配制。
        3. 生长培养液:DMEM,添加 25 mmol/L 葡萄糖、6.8 mmol/L 丙酮酸盐、0.25U/ml 胰岛素、50ng/ml EGF、2.5% FBS 和上述 HBSS 中的抗菌素,在 7.5% CO2 条件下用碳酸氢钠调整 pH 至 7.4。
        4. S-DMEM: 含有 2% 山梨糖醇的生长培养液,过滤灭菌

        以上液体应为 37℃

        5. 90 mm Petri 培养皿 


        6. 普通容器或 30~50 ml 离心管 


        7. 24 孔培养板,用胶原蛋蛋白预涂:
        (a) 稀释 10X Vitrogen 储存液;
        (b ) 每孔加入 0.5 ml Vitrogen,孵育 3 h;
        (c) 吸去多余的 Vitrogen,将培养板放入层流超净工作台,风干。


        8. 可用保鲜膜(Saran Wrap) 包裹,在 37℃ 条件下保存,于 1 周内使用。


        9. 25 cm2 培养瓶 


        10. 手术刀(4 号刀柄,22 号刀片)


        11. Moveue 吸管或类似的大孔径吸管

        二、操作步骤

        人结肠隐窝的分离


        1. 从病人切除结肠后,尽快将组织放人 DMEM 中。初步研究表明,只要尽快放人 DMEM,结肠组织可在 4℃ 条件下短时间内(2 h) 保存,但不应保存更长时间。


        2. 用 1X HBSS/PSG 清洗结肠组织 2 次,以清除污染物。 


        3. 将结肠组织移入盛有 HBSS/PSG 的干净 Petri 培养皿。


        4. 尽量除去平滑肌,用两把相对的手术刀将组织切成小块。


        5. 将组织块移入盛有 20 ml HBSS/PSG 的 25 cm2 培养瓶,通过用 Movette 吸管吹打冲洗组织块。


        6. 让组织块沉下,然后吸去 HBSS/PSG。


        7. 重复冲洗,直至 HBSS/PSG 清澈。常需重复冲洗 5 次。


        8. 将组织块移入 Petri 培养肌,并吸去多余的 HBSS/PSG。


        9. 用手术刀修切组织块,使组织块面相当平。用大口径吸管将组织块移入 25 cm2 培养瓶。须提前用 HBSS/PSG 将吸管内面弄湿,以防组织块粘贴吸管。


        10. 静置组织块,然后吸去多余的 HBSS/PSG。


        11. 加人 25~30 ml 混合消化液。


        12. 在 37℃ 条件下孵育 1 h 。


        13. 换混合消化液:
        (a) 让组织沉下。
        (b) 轻轻从培养瓶吸去混合消化液,勿吸去未被消化的组织块。
        (c) 加人混合消化液,在 37℃ 条件下继续孵育 1~2 h 。
        (d ) 每 15~30 min 检查组织 1 次,勿使隐窝过度消化。约 70%~80% 隐窝分离时,消化过程即结束。

        其他说明 不要等到全部隐窝被分离,由于过度消化反而导致得到的隐窝减少。
        人结肠隐窝的沉降

        用山梨糖醇沉降法纯化已分离的隐窝。在沉降管顶部可见到较大的脂肪和间质组织的凝集物。由于凝集物会影响沉降,应在开始几个步骤将凝集物除去。


        14. 将培养瓶内消化的组织悬液分人两只 30 ml 无菌离心管,标为「 Set1」。


        15. 在组织悬液上面加 S-DMEM 至 25 ml,然后除去漂浮的脂肪或间质组织。


        16. 让组织悬液静置 1 min ,以便使未消化的组织沉降。


        17. 除去漂在上面的脂性物质,然后轻轻将上层悬液移人两只离心管,标为「 Set 2」。 


        18. 让悬液静置 30s。


        19. 将上层悬液移人两只离心管,标为「 Set 3」。


        20. 在悬液上面加 S-DMEM。


        21. 离心(200~300 g,4 min)


        22. 吸去上清液。


        23. 轻弹离心管底部,使聚集的隐窝分散。


        24. 重复用 S-DMEM 混悬隐窝,然后离心。S-DMEM 清洗和离心步骤须重复 5 次左右,直至上清液清澈。


        25. 应在显微镜下检查 Set1 和 Set 2 离心管中的沉降组织内是否含有隐窝。如含有隐窝较多,将沉降组织摇匀,从步骤 14 开始重复沉降。如仅含有未消化组织,可将其丟弃。


        26. 上清液变清澈时,准备种植隐窝。为了使细胞生长良好,需要合适的种植密度。一般情况下,按每孔(24 孔培养板)800~1000 个/ml 密度种植时隐窝生长最好。按下列方法确定隐窝密度。
        (a) 用 10 ml 生长培养液混悬分离的隐窝,然后摇匀。
        (b) 取出 100ul,加入 900ul 生长培养液。
        (c) 从上液中取 100ul 悬液,计数隐窝。每毫升悬液的隐窝数目 = 计数的隐窝数目 X 100


        27. 在 37°C 和 7.5% C02 条件下孵育 2d,让细胞贴壁。


        28. 从培养板吸去含有未附着细胞的培养液,换入新鲜培养液。


        29. 每隔 5 天补充 0.5 ml 新鲜培养液。                                                                  

        来源:丁香实验

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