材料与仪器
步骤
1. 安装并设定 Powerlab 记录肌张力的Chart 设置文件；调定刺激器有关参数（刺激强度2 V 左右，刺激间隔990ms，波宽4 ms）；
2. 大鼠称重，麻醉；20%乌拉坦腹腔注射（1.2～1.5 g/kg）。数分钟后翻正反射消失，即可进行实验；
3. 分离坐骨神经：在髋关节后，坐骨结节内侧凹陷处切开皮肤，钝性分离肌肉，暴露出一段坐骨神经（粗大白色神经），用浸有普鲁卡因的棉线，围绕坐骨神经打一个结，在坐骨神经干上做传导阻滞麻醉，排除下行干扰。
4. 分离腓神经：在膝关节外侧，剪开皮肤，钝性分离肌肉组织，分离腓神经（位置较浅，很细，在横向与斜向纤维之间，向外下方走行。深层为胫神经，不可误认），神经穿线备用（以备在此安装刺激电极，进行刺激实验）。
5. 分离胫前肌：将大鼠两前肢固定在手术台上（仰卧），从后肢踝关节正前方向上剪开小腿皮肤，剪断踝关节前部横韧带，分离胫前肌肌腱，沿胫骨分离胫前肌（注意不要损伤血管），在踝部的胫前肌肌腱处扎线，于结扎线远端切断肌腱。
6. 连接仪器：手术操作完成后，将胫前肌与Powerlab 的拉力换能器相连接，腓神经处安放刺激电极。最适前负荷设定为10 g 左右。稳定一段时间后，于给药前记录一段正常的肌肉收缩曲线。
7. 给药1：腹腔注射tubocurarine 0.2 mg/kg体重（0.005% tub，0.4 ml/100 g 体重），待收缩振幅被抑制了20%时（以正常振幅为M，可由计算机显示屏上实时观察收缩振幅相对于M 点的变化情况。也可以拉开左侧窗口，进行对比观察），立即由舌静脉匀速注射neostigmine 0.1 mg/kg体重（0.01%Neo，0.1 ml/100 g 体重）。（注意在给药时加注Comment）
8. 给药2：肌肉收缩恢复后，腹腔注射Succinylcholine 1.2～2.4 mg/kg体重（0.03%Suc，0.4～0.8 ml/100 g 体重），待收缩振幅被抑制了20%时，立即由舌静脉匀速注射 Neo0.1 mg/kg体重（0.01%Neo，0.1 ml/100g 体重）。
9. 对所记录的胫前肌收缩图形进行分析，讨论分析结果。
2. 大鼠称重，麻醉；20%乌拉坦腹腔注射（1.2～1.5 g/kg）。数分钟后翻正反射消失，即可进行实验；
3. 分离坐骨神经：在髋关节后，坐骨结节内侧凹陷处切开皮肤，钝性分离肌肉，暴露出一段坐骨神经（粗大白色神经），用浸有普鲁卡因的棉线，围绕坐骨神经打一个结，在坐骨神经干上做传导阻滞麻醉，排除下行干扰。
4. 分离腓神经：在膝关节外侧，剪开皮肤，钝性分离肌肉组织，分离腓神经（位置较浅，很细，在横向与斜向纤维之间，向外下方走行。深层为胫神经，不可误认），神经穿线备用（以备在此安装刺激电极，进行刺激实验）。
5. 分离胫前肌：将大鼠两前肢固定在手术台上（仰卧），从后肢踝关节正前方向上剪开小腿皮肤，剪断踝关节前部横韧带，分离胫前肌肌腱，沿胫骨分离胫前肌（注意不要损伤血管），在踝部的胫前肌肌腱处扎线，于结扎线远端切断肌腱。
6. 连接仪器：手术操作完成后，将胫前肌与Powerlab 的拉力换能器相连接，腓神经处安放刺激电极。最适前负荷设定为10 g 左右。稳定一段时间后，于给药前记录一段正常的肌肉收缩曲线。
7. 给药1：腹腔注射tubocurarine 0.2 mg/kg体重（0.005% tub，0.4 ml/100 g 体重），待收缩振幅被抑制了20%时（以正常振幅为M，可由计算机显示屏上实时观察收缩振幅相对于M 点的变化情况。也可以拉开左侧窗口，进行对比观察），立即由舌静脉匀速注射neostigmine 0.1 mg/kg体重（0.01%Neo，0.1 ml/100 g 体重）。（注意在给药时加注Comment）
8. 给药2：肌肉收缩恢复后，腹腔注射Succinylcholine 1.2～2.4 mg/kg体重（0.03%Suc，0.4～0.8 ml/100 g 体重），待收缩振幅被抑制了20%时，立即由舌静脉匀速注射 Neo0.1 mg/kg体重（0.01%Neo，0.1 ml/100g 体重）。
9. 对所记录的胫前肌收缩图形进行分析，讨论分析结果。
来源：丁香实验
