原理
动物的离体肠肌在适宜的营养液环境中，仍具有兴奋和收缩等特性。由于肠肌上分布有M 受体、α受体和β受体等，当向营养液中加入Ach（N，M 受体激动药）、阿托品（M 受体阻断药）、毛果芸香碱（M受体激动药）、肾上腺素（α、β受体激动药）及新斯的明（抗胆碱酯酶药）等药物时，可与相应的受体结合，激动或阻断相应的受体，引起肠肌收缩或松弛。氯化钡是一种非受体作用的有毒化合物，对肠肌有直接的兴奋收缩作用，常用于药理实验中。
材料与仪器
步骤
一、步骤
⒈ 家兔１只，击头致死，立即剖腹，轻轻剪下空肠和回肠上半段，浸入冷台氏液中，将肠系膜沿肠壁分离掉，用台氏液把肠内容物冲洗干净，将肠剪成2～2.5 cm 长的肠段备用，如不立即使用，可将肠段放入台氏液，置于冰箱中保存，一般可保持活力在12 小时左右。
⒉ 实验前，先调好恒温装置，温度保持在37～38 °C，在浴槽中装入台氏液，并标记好液面高度。经气泵注入空气（每秒1～2 个气泡）。
⒊ 启动BL-420 生物信号处理系统，连接张力换能器于相应通道，将张力换能器固定于铁支架上。
⒋ 取肠管一段，两端穿线，一端固定于通气管的小钩上，放入浴槽中，另一端连接在张力换能器上。待离体肠段稳定5～10 min后，调试BL-420生物信号处理系统：设置增移、速度、打印通道、屏幕及曲线色彩等。
⒌ 进入记录状态：描记一段正常收缩曲线，继而依次向浴槽中加药物进行实验。
注意：每加入一次药液，至作用明显后，用台氏液连续冲洗3 次，等到曲线恢复到用药前的水平，随之描记一段基线，再加入下一个药液。如果肠管反应已失灵，可更换一段肠管。
①0.001%Ach溶液0.2 ml，当肠肌活动曲线降至基线时，连续冲洗３次。
②重复①，作用达最高点时再加０.１％阿托品０.２ml，记录曲线变化后连续冲洗３次。
③加１％氯化钡1.０ml，作用达高峰时立即加入０.１％阿托品１.０ml，记录曲线变化。
④待肠肌活动稳定后加入０.１％毛果芸香碱０.５ml，观察描记肠肌活动曲线后连续冲洗３次。
⑤加０.１％阿托品０.５ml，作用明显时再加０.１％毛果芸香碱０.５ml，观察描记肠肌活动曲线后连续冲洗３次。
⑥加０.０１％肾上腺素０.５ml，观察描记肠肌活动曲线后连续冲洗３次。
⑦加０.３％普萘洛尔０.5ml，接触２～３min 后，再加０.０１％肾上腺素０.５ml，观察描记肠肌活动曲线后连续冲洗３次。
⑧加０.０５％新斯的明０.５ml，观察描记肠肌活动曲线
二、结果打印出实验曲线，并对曲线进行讨论。
注意事项
1. 实验用动物在实验前24 h 禁食，但不禁水，以保持肠腔无粪便。
2. 培养皿中的台氏液温度保持在37～38 °C，否则将影响肠肌活动。
3. 每给1 次药物后，均要用台氏液冲洗3 次，每次进液保留时间≥1 min。
常见问题
一、哪些传出神经药物对肠肌活动有明显影响？叙述其作用机制及临床意义。
来源：丁香实验
