原理
活细胞表面保留有较完整的抗原或受体，先用特异性鼠源性单克隆抗体与细胞表面相应抗原结合，再用荧光标记的第二抗体结合，根据所测定的荧光强度和阳性百分率即可知相应抗原的密度和分布。
材料与仪器
步骤
制备活性高的细胞悬液（培养细胞系、外周血单个核细胞、胸腺细胞、脾细胞等均可用本法）
1. 用10％ FCSRPMll640 调整细胞浓度为5×106—1×107／ml
2. 取40 μl细胞悬液加入预先有特异McAb（5——50 μl）的小玻璃管或塑料离心管，再加50 μl 1:20（用DPBS稀释）灭活正常兔血清。
3. 4℃静置30 min。
4. 用洗涤液洗涤2次，每次加洗涤液2 ml，1000 r／min×5 min。
5. 弃上清，加入50μl工作浓度的羊抗鼠（或兔抗鼠）荧光标记物，充分振摇。
6. 4℃静置30 min。
7. 用洗涤液洗涤2次，每次加液2 ml，1000 r／min×5 min。
8. 加适量固定液（如为FCM制备标本，一般加入1 ml固定液，如制片后在荧光显微镜下观察，视细胞浓度加入100—500 μl固定液）
9. FCM检测或制片后荧光显微镜下观察，（标本在试管中可保存5——7天）
注意事项
1. 整个操作在4℃下进行，洗涤液中加有比常规防腐剂量高10倍的NaN3，上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落。
2. 洗涤要充分，以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合，出现假阴性。
3. 加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白Fc受体，降低和防止非特异性染色。
4. 细胞活性要好，否则易发生非特异性荧光染色。
常见问题
来源《实验动物与动物实验方法学》
来源：丁香实验
