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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
33
- 英文名:
Coenzyme Ⅱ NADP (H) content test kit
- CAS号:
无
- 保质期:
1年
- 供应商:
上海晅科生物科技有限公司
- 保存条件:
2-8℃
- 规格:
100管/48样
辅酶ⅡNADP(H)含量试剂盒说明书
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义
辅酶ⅡNADP(H)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,NADP+和 NADPH 含量测定可以计算NADP(NADPH + NADP+ )含量和NADPH/NADP+比值,其变化与磷酸戊糖途径和生物合成以及抗氧化反应密切相关。NADPH/NADP+比值不仅是细胞氧化还原态的主要标志之一,而且在 PPP 途径、生物合成和抗氧化代谢中具有重要调控作用。
测定原理
分别用酸性和碱性提取液提取样品中 NADP+和 NADPH。NADPH 通过 PMS 的递氢作用, 使氧化型噻唑蓝(MTT)还原为甲瓒,570nm 下检测吸光值,从而测定 NADPH 含量。利用 6-磷酸葡萄糖脱氢酶还原 NADP+为NADPH,从而检测NADP+含量。所需的仪器和用品
酶标仪、台式离心机、可调式移液器、96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。试剂的组成和配制
酸性提取液:液体 50mL×1 瓶,4℃保存; 碱性提取液:液体 50mL×1 瓶,4℃保存; 试剂一:液体 10 mL×1 瓶,4℃保存;试剂二:粉剂×1 支,-20 ℃保存,用时加入 3mL 蒸馏水,混匀;溶解后 4 ℃保存一周; 试剂三:粉剂×1 支,-20℃保存,用时加入 3mL 蒸馏水,混匀;溶解后 4℃保存一周; 试剂四:粉剂×1 支,4 ℃保存,用时加入 3mL 蒸馏水,混匀;溶解后 4℃保存一周; 试剂五:液体 3.6mL×1 支,4 ℃保存;
试剂六:液体 30mL×1 瓶,4 ℃保存; 试剂七:液体 50mL×1 瓶,4 ℃保存。NADP+和 NADPH 的提取
- 血清(浆)中 NADP+和 NADPH 的提取
NADPH 的提取:按照血清(浆)体积(mL):碱性提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议取约 0.1mL 血清(浆),加入 1mL 碱性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
- 组织中 NADP+和 NADPH 的提取:
NADPH 的提取:按照组织质量(g):碱性提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议取约
0.1g 组织,加入 1mL 碱性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);
- 细胞或细菌中 NADP+和 NADPH 的提取:
(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。NADPH 的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104 个):碱性提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 碱性提取液), 超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次),95℃水浴 5min
(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。测定步骤:
1、 分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 570nm,蒸馏水调零。
2、 加样表(在 1.5mL 棕色EP 管中按下表依次加样):
| 试剂名称(μL) | 对照管 | 测定管 |
| 样本 | 20 | 20 |
| 试剂一 | 80 | 80 |
| 试剂二 | 30 | 30 |
| 试剂三 | 30 | 30 |
| 试剂四 | 30 | 30 |
| 试剂五 | 30 | 30 |
| 试剂六 | 200 | 混匀,室温避光静置 20min |
| 试剂六 | 200 |
| 试剂七 | 400 | 400 |
注意事项
1、如果一次性测定样本数较多,可将试剂一、二、三和四按比例配成混合液。2、对照管和测定管的测定步骤的区别:对照管加完试剂一、二、三、四和五后必须马上加试剂六;测定管加完试剂一、二、三、四和五后必须反应 20min 后再加试剂六。
3、反应过程中注意避光。
4、若 NADP+测定中△A(A2-A1)≤0.0144,NADPH 测定中△A(A2-A1)≤0.0259,说明样本中辅酶含量较低,已低于检测限,可做如下调整:(1)将测定管避光静置时间 20min延长到 60min;(2)在提取阶段增加取样量,即取 0.2g 样本或 0.2mL 样本加入 1mL 提取液。 5、由于每一个测定管需要设一个对照管,本试剂盒 100 管保证测 48 个 NADP+或 NADPH.
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NADP+和 NADPH 含量的计算
(一)NADP+含量的计算
标准条件下的回归曲线为y = 0.0985x + 0.0144,R2 = 0.9998;其中 y 为△A,x 为 NADP+浓度 nmol/mL1、血清(浆)中NADP+含量计算
NADP+含量(nmol/mL)=[ (△A -0.0144)÷0.0985×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 203×(△A -0.0144)
2、组织、细菌或细胞中NADP+含量计算(1)按样本蛋白浓度计算
NADP+ (nmol/mg prot)=[(△A -0.0144)÷0.0985×V1) ]÷(V1×Cpr)= 10.2×(△A -0.0144)÷Cpr
-
- 按样本鲜重计算
-
- 按细菌或细胞密度计算
(二)NADPH 含量的计算
标准条件下的回归曲线为y = 0.6198x + 0.0259,R2 = 0.9977;其中 y 为△A,x 为NADPH浓度 nmol/mL
1、血清(浆)中NADPH 含量计算
NADPH 含量(nmol/mL)= [(△A -0.0259)÷0.6198×V1)] ÷(V3×V1÷V2)= 32.3× ( △A -0.0259)
2、组织、细菌或细胞中NADPH 含量计算
- 按样本蛋白浓度计算
- 按样本鲜重计算
- 按细菌或细胞密度计算
V1:加入反应体系中样本体积,0.02mL;V2:加入提取液体积,2mL;V3:加入血清(浆) 体积:0.1mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数, 500 万。
注意:最低检测限为 0.01nmol/mL 或 0.01nmol/g 鲜重 或 0.001nmol/mg prot
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文献和实验与残渣重量之差,计算粗脂肪含量。由于有机溶剂的抽提物中除脂肪外,还或多或少含有游离脂肪酸、甾醇、磷脂、蜡及色素等类脂物质,因而抽提法测定的结果只能是粗脂肪。三、实验材料、主要仪器和试剂1.实验材料油料作物种子、中速滤纸 2.仪器: (1)索氏脂肪抽提器(图1)或YG-Ⅱ型油分测定器 (2)干燥器(直径15-18cm,盛变色硅胶)(3)不锈钢镊子(长20cm)(4)培养皿(5)分析天平(感量
漏斗冲入100mL 容量瓶中,加水达70-80mL,摇匀后置于80℃恒温水浴上浸提0.5h。 待上述样品冷却后,沉淀蛋白质,加入5%硫酸锌5mL,再慢慢滴入0.3mol/L Ba(OH)2 5mL,以沉淀蛋白质。振荡后静置,至上层出现清液后再加一滴Ba(OH)2,直至无白色沉淀时,向容量瓶加水至刻度。 3.还原糖含量的测定: 过滤上述已定容的样品液,取5mL 滤液,再定容到100mL(此步视样品的含糖量而定)。取已稀释的溶液2mL,与标准葡萄糖显色法相同:加铜试剂2mL,煮沸10min,加砷钼
1.84); (2)9.2mol/L HClO4; (3)2%蒽酮试剂:同蒽酮法(或9%苯酚,同方法一); (4)淀粉标准液:准确称取100mg纯淀粉,放入100ml容量瓶中,加60~70ml热蒸馏水,放入沸水浴中煮沸0.5h,冷却后加蒸馏水稀释至刻度,则每ml含淀粉1mg,吸取此液5.0ml,加蒸馏水稀释至50ml,即为每ml含淀粉100μg的标准液。 【方法】 1.标准曲线制作 取小试管11支从0~10编号,按表24-3加入










