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文献和实验、擦桌子、超净工作台等,然后用3‰来苏尔或新洁尔灭或0.5%过氧乙酸擦拭。 2.CO2孵箱(培养箱)灭菌:先用3‰新洁尔灭擦拭,然后用75%酒精擦拭或者0.5%过氧乙酸,再用紫外灯照射。 3.实验前灭菌:打开紫外灯、三氧杀菌机、空气净化器系统各20-30分钟。 4.实验后灭菌:用75%酒精(3‰新洁尔灭)擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物台。 (二)实验人员的无菌准备 1.肥皂洗手。 2.穿好隔离衣、带好隔离帽、口罩、放好拖鞋。 3.用75%酒精棉球擦净双手
),在冻存前1d换液。 (2)按常规方法把培养细胞制备成悬液,计数,使细胞密度达5×107/ml左右密度,离心,去上清。 (3)加入配制好的冻存液(培养液6.8ml,小牛血清2ml,DMSO 1ml,5.6%NaHCO3 0.1ml),按与去上清相同的量一滴一滴加入离心管中,然后用吸管轻轻吹打令细胞重悬。冻存细胞时培养液中加入保护剂10%二甲基亚砜(DMSO) 或甘油,可使冰点降低,使细胞内水分在冻结前透出细胞外。 (4)分装于无菌冻存管中,每管加1.5m悬液。 (5)旋好冻存管并仔细
溶液(在IEF结束前1小时)。使用之前,在20ml平衡溶液中加入0.2g DTT。2.IEF结束后,移去管子中的阳性和阴性溶液。3.用87%的甘油溶液覆盖帽(cap)凝胶一侧。4.加5ml平衡溶液到Petri盘。5.用PP线挤出凝胶:PP线从帽凝胶一侧插入,管子加样一侧浸入去离子水,小心地向下挤出凝胶。与此同时可看到水中的覆盖液的溶解。凝胶被拉出5min后,用水迅速清洗挤压端。然后将管子保持在盛有平衡溶液的Petri-盘子上,整个凝胶被PP线拉到盘子里。每个盘子里可平衡两块胶。6.室温振荡平衡凝胶
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