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西安百萤生物科技有限公司
ApoSight 绿色半胱天冬酶3/7底物是第一个直接检测活细胞中半胱天冬酶活性的荧光探针。它由三个部分组成,包括a)荧光团,b)半胱天冬酶选择性肽片段(DEVD),以及c)细胞穿透部分。细胞穿透部分将探针带入活细胞。进入活细胞后,半胱天冬酶选择性肽片段被半胱天冬酶裂解以释放荧光团。恢复的荧光强度直接与要检测的胱天蛋白酶3/7的活性有关。与活细胞中现有的半胱天冬酶测定相比,ApoSight Green Caspase 3/7底物更加稳定,方便和准确。 ApoSight 绿色胱天蛋白酶3/7底物释放出Ex / Em〜490/520 nm的荧光团。如NucView试剂所报道的,它不需要DNA相互作用就能发荧光。如FMK肽探针所报道的,它不抑制胱天蛋白酶活性。尽管胱天蛋白酶的荧光FMK肽抑制剂被广泛用于检测活细胞中的胱天蛋白酶活性,但该技术有一些严重的局限性:a)FMK半胱天冬酶抑制剂具有很高的细胞毒性,因为FMK肽与活性胱天蛋白酶共价结合。 b)FMK肽与caspase的不可逆共价结合会抑制caspase活性,导致假阳性凋亡。 C) FMK分析具有极高的背景,并且需要大量洗涤,从而导致极低的通量。 d)FMK肽在水溶液中不稳定,必须立即使用。 ApoSight Green Caspase 3/7底物可以用96孔或384孔板进行实验,并易于适应自动化。
适用仪器
| 流式细胞仪 | |
| 激发: | 488nm激光 |
| 发射: | 530/30nm滤波片 |
| 通道: | FITC通道 |
| 荧光显微镜 | |
| 激发: | FITC滤波片组 |
| 发射: | FITC滤波片组 |
| 推荐孔板: | 黑色透明 |
产品说明书
样品实验方案
简要概述
1.使用96孔板的密度为5×104至2×105细胞/ 100 µL /孔的待测化合物制备细胞
2.加入等体积的ApoSight Caspase 3/7底物工作溶液
3.在5%CO2培养箱中于37°C孵育60分钟
4.用HHBS洗涤细胞1-2次
5.使用带有530/30 nm滤波片(FITC通道)的流式细胞仪或带有FITC滤波片组的荧光显微镜分析细胞
溶液配制
1.储备溶液配制
所有未使用的储备溶液应分为一次性使用的等分试样,并在制备后储存在-20°C下。 避免重复冻融循环。
ApoSight Green Caspase 3/7底物储备液(200X)在ApoSight 绿色胱天蛋白酶3/7底物瓶中加入50 µL DMSO,制成200X ApoSight 绿色胱天蛋白酶3/7底物原液。
注意,一次性使用等分试样,以避免重复的冻融循环。
2.工作溶液配置
ApoSight Green Caspase 3/7底物工作溶液
在ApoSight 绿色胱天蛋白酶3/7底物瓶中加入50 µL DMSO,制成200X ApoSight 绿色胱天蛋白酶3/7底物原液。
注意,一次性使用等分试样,以避免重复的冻融循环。
样品示例及操作
悬浮培养中诱导细胞凋亡的实例
1.用2μg/ mL喜树碱处理Jurkat细胞3小时
2.用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3-4小时
3.用4μg/ mL喜树碱处理HL-60细胞4小时
4.用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。
注意,应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导凋亡的最佳细胞密度。
荧光显微镜的样品方案
1.用5×104至2×105个细胞/ 100 µL /孔/ 96孔板的密度制备含待测化合物的细胞。
2.向细胞中加入等体积的Caspase 3/7底物工作溶液(100 µL /孔/ 96孔板)。
3.在5%CO2培养箱中于37°C孵育60分钟。
4.用HHBS或您选择的缓冲液洗涤细胞1-2次。
5.使用FITC滤波片组的荧光显微镜成像。
流式细胞术的样品方案
1.以1:200的比例将200 X ApoSight Green Caspase 3/7底物原液添加到细胞溶液中,并在5%CO2培养箱中于37°C孵育细胞60分钟。
注意,用于ApoSight Green Caspase 3/7底物标记的细胞可浓缩至约5 X 106细胞/ mL。适当的孵育时间取决于所用的单个细胞类型和细胞浓度。
2.使用530/30 nm滤波片(FITC通道),通过流式细胞仪检测荧光强度。
注意,要增加信号/背景比,请以约200 g的速度旋转细胞5分钟,用1 mL洗涤缓冲液(例如HHBS或所选缓冲液)洗涤细胞,然后将细胞重悬至所需的洗涤量。
图示

图1.使用ApoSight 绿色胱天蛋白酶3/7底物检测Jurkat细胞中胱天蛋白酶3/7活性。将Jurkat细胞(200,000个细胞/孔/ 96孔板)用1μM星形孢菌素或DMSO处理4小时。将细胞与Caspase 3/7底物工作溶液在37°C下孵育1小时。使用FITC滤波片组,用荧光显微镜拍摄图像。
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文献和实验Figure 2.D1.1 Schematic presentation of the differentiation of mouse ES cells into substrate‐adherent embryonic stem cell−derived neural aggregates (SENAs). Mouse ES cells expressing enhanced green fluorescent protein (EGFP) under the control
of the rhodamine 110, bis-L-aspartic acid amide substrate by active caspase-3. The staining pattern of the Hoechst 33342 dye reveals that the majority of the rhodamine 110–positive cells also contain condensed or fragmented nuclei characteristic of apoptosis
Fluorophores Detected: Sybr-Green I, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, ROX, TAMRA, CY3, CY3.5, CY5, CY5.5, Oregon Green™, CAL Red™, Red 640, Texas Red Sample Capacity:
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