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GM130 (D6B1) XP®Rabbit mAb

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  • CS-K970962
  • 2025年07月16日
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    • 亚型

      IgG

    • 形态

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    • 保存条件

      低温冷藏

    • 供应商

      上海莼试

    • 应用范围

      详见说明书

    • 浓度

      1mg/1ml

    • 抗体英文名

      GM130 (D6B1) XP®Rabbit mAb

    • 抗体名

      GM130 (D6B1) XP®Rabbit mAb

    GM130 (D6B1) XP®Rabbit mAb抗体的多样性:
    抗体的异质性。抗体的组成极为复杂,是由成千上万、多种多样的免疫球蛋白(Ig)分子所组成。这些Ig分子在形状、大小、结构以及氨基酸的组成和排列上,既相似,又有差别。由于有差别,它们的电泳活性就有很大的变化。
    因为抗体具有与抗原决定簇相对应的结合部位(抗原结合簇),所以抗体与抗原的结合具有特异性。另一方面,抗体本身是一种蛋白质,具有本身的氨基酸组成、排列和立体结构,对异种动物来说,它又是抗原。各类Ig都具有可用血清学方法检出的抗原特异性,它们表现出不同的血清学类型。
    产品细节图片1
    单克隆抗体:
    1.概念:由单个B淋巴细胞进行无性繁殖形成的细胞系所产生出的化学性质单一、特异性强的抗体。
    2.特点:化学性质单一,特异性强,灵敏度高。
    3.单克隆抗体的应用:
    (1)诊断疾病:诊断病毒引起的疾病和用癌细胞抗原制备的单克隆抗体定位诊断。
    (2)药物导向治疗:运用药物与单克隆抗体连接在一起制成“生物导弹”
    (3)分离和纯化抗原分子。单抗的制备过程:
    1.动物免疫:注射特定抗原蛋白
    2.分离脾淋巴细胞:与培养好的骨髓瘤细胞混合,人工诱导细胞融合。
    3.细胞融合:淋巴细胞杂交瘤的制备
    4.杂交瘤细胞的筛选:HAT选择培养基筛选出杂交瘤细胞。(含次黄嘌呤(H)、氨基喋呤(A)及胸腺嘧啶核苷(T)的一种培养基,其中三种成分与细胞DNA合成有关,骨髓瘤细胞遗传缺陷型,不能利用)
    5.培养杂交瘤细胞:体外培养杂交瘤细胞,从培养液中分离提取单克隆抗体。或者,将杂交瘤细胞移植到小鼠腹腔内,从小鼠腹水中分离提取单克隆抗体。
    6.单克隆抗体的制备和冻存、纯化
    单抗原理:
    抗体主要由B淋巴细胞合成。每个B淋巴细胞有合成一种抗体的遗传基因。动物脾脏有上百万种不同的B淋巴细胞系,含遗传基因不同的B淋巴细胞合成不同的抗体。当机体受抗原刺激时,抗原分子上的许多决定簇分别激活各个具有不同基因的B细胞。被激活的B细胞分裂增殖形成多克隆,并合成多种抗体。如果能选出一个一种专一抗体的细胞进行培养,就可得到由单细胞经分裂增殖而形成细胞群,即单克隆。单克隆细胞将合成一种决定簇的抗体,称为单克隆抗体。
    产品细节图片2
    单抗制备过程:
    1.提取合成专一性抗体的单个B淋巴细胞(不能在体外生长)。
    2.应用细胞杂交技术使骨髓瘤细胞与B淋巴细胞融合,得到杂交瘤细胞。
    3.对杂交瘤细胞进行细胞培养,选出所需要的细胞群,并进行克隆化培养,得到稳定的杂交瘤细胞,再进行大规模培养获得单克隆抗体。
    4.提纯,一般常用金黄色葡萄球菌蛋白A-琼脂糖4B亲和层析法。
    多抗和单抗特性比较:
    (1)均一性。一种单抗中,每个抗体的化学结构和氨基酸顺序都相同,只有一种Ig亚类。多抗是多种种类和亚类Ig的混合物。
    (2)稳定性。单抗对PH变化敏感,对热不稳定,提纯过程中易变性,而多抗的稳定性则较好。 (3)特异性。单抗是单一地针对抗原的某一决定簇,所以用它进行血清学反应时,特异性强,敏感性高,一般不发生交叉反应。而多抗能与抗原上的多种抗原决定簇结合,所以特异性较差,较易引起交叉反应。
      (4)重复性。单抗的重复性好,而多抗每批都不一样。
      (5)沉淀反应。多抗由于与抗原多价结合容易形成网络样沉淀,而单抗只与抗原结合产生二聚体,不能直接形成抗原抗体沉淀物。

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      h)即可。2. 修复大法——不仅仅是「煮一煮」微波炉修复:简单易行效果好,CST 推荐使用微波炉完成修复。合适的修复液:根据抗体说明书使用合适的修复液。用柠檬酸修复后,切片需浸泡在修复液中,自然冷却;而用 EDTA 修复后,切片可直接从修复缸中取出,直接进行下一步。注:使用不同的修复方式和不同生产商的抗体检测人肺癌组织中 EGFR 的表达。第一排为 CST 的 EGF Receptor (D38B1) XP® Rabbit mAb(#4267),EDTA 的修复方式明显优于柠檬酸盐及胃蛋白

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      ) and incubate for 4 minutes. Centrifuge at max speed for 30 seconds and discard flowthrough. 7. Add equal volume of XP2 buffer to the cleared lysate, mix the sample throughly by vortexing. 8. Apply entire sample including any precipitation

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