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- AAT Bioquest
- 美国
- 1510
- 2025年12月12日
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1
zFluor 633 琥珀酰亚胺酯
| 货号 | 1510 | 存储条件 | f/l |
| 规格 | 1 mg | ||
| Ex (nm) | 623 | Em (nm) | 638 |
| 分子量 | 1163.33 | 溶剂 | DMSO |
| 产品详细介绍 | |||
简要概述
zFluor 633 琥珀酰亚胺酯是美国AAT Bioquest生产的荧光染料，与市场上其他类似波长染料相比，我们开发的zFluor 系列染料在给定波长下具有可能最高的光稳定性。zFluor 647具有与流行的Cy5®（GE Healthcare）和AlexaFluor®647（ThermoFisher）几乎相同的光谱特性。其高热和光稳定性使其成为单分子检测应用和高分辨率显微镜（如PALM，dSTORM和STED）的理想选择。在相同的测试条件下，zFluor 647具有比Cy5®和AlexaFluor®647高得多的臭氧稳定性，使其成为微阵列和其他生物芯片应用的更好选择。此外，zFluor 标记的寡核苷酸和多肽比AlexaFluor®647和Cy5®标记的更亮，更光稳。该特征对于荧光原位杂交（FISH）非常有用。它在633 nm的He-Ne激光器，氪的647 nm线处受到很好的激发。 -Ion激光器或发射650 nm的二极管激光器。百萤生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供优质的zFluor 633 琥珀酰亚胺酯。
产品说明书
染色样本分析
操作步骤
1.准备蛋白质储备溶液（溶液A）：
将100μL反应缓冲液（如1 M碳酸钠溶液或1 M磷酸盐缓冲液，pH~9.0）与900μL目标蛋白溶液（如抗体，蛋白质浓度> 2 mg / ml，如果可能）混合至100μL给予1 mL蛋白质标记原液。
注1：蛋白质溶液（溶液A）的pH值应为8.5±0.5。如果蛋白质溶液的pH低于8.0，则使用1M碳酸氢钠溶液或1M pH 9.0磷酸盐缓冲液将pH调节至8.0-9.0的范围。
注2：蛋白质应溶解于pH7.2-7.4的1X磷酸盐缓冲盐水（PBS）中。如果蛋白质溶解在Tris或甘氨酸缓冲液中，则必须用pH7.2-7.4的1X PBS透析，以除去广泛用于蛋白质沉淀的游离胺或铵盐（例如硫酸铵和乙酸铵）。
注3：用牛血清白蛋白（BSA）或明胶稳定的不纯抗体或抗体不能很好地标记。
注4：如果蛋白质浓度低于2 mg / mL，则结合效率会显着降低。为获得佳标记效率，建议极终蛋白质浓度范围为2-10 mg / mL。
2.准备染料储备溶液（溶液B）：
将无水DMSO加入到iFluor 染料SE小瓶中以制备10-20mM储备溶液。 通过移液或涡旋混合均匀。
注意：在开始缀合前准备染料储备溶液（溶液B）。 及时使用。 染料储备溶液的长期储存可降低染料活性。 溶液B可在冰箱中保存两周，避光保存。 避免冻融循环。
3.确定佳染料/蛋白质比例（可选）：
注意：每种蛋白质都需要不同的染料/蛋白质比例，这也取决于染料的性质。蛋白质的过度标记可能不利地影响其结合亲和力，而低染料/蛋白质比率的蛋白质缀合物会降低灵敏度。我们建议您通过使用连续不同量的标记染料溶液重复步骤4和5来实验确定佳染料/蛋白质比率。通常，对于大多数染料 - 蛋白质缀合物，推荐使用4-6种染料/蛋白质。
3.1使用10：1摩尔比的溶液B（染料）/溶液A（蛋白质）作为起始点：将5μl染料储备溶液（溶液B，假设染料储备溶液为10 mM）加入到样品瓶中。蛋白质溶液（95μl溶液A）有效摇动。假设蛋白质浓度为10mg / mL并且蛋白质的分子量为~200KD，蛋白质的浓度为~0.05mM。
注意：蛋白质溶液中DMSO的浓度应<10％。
3.2运行缀合反应（参见下面的步骤4）。
3.3重复＃3.2，溶液B /溶液A的摩尔比为5：1;分别为15：1和20：1。
3.4使用预制的旋转柱纯化所需的缀合物。
3.5计算上述4种结合物的染料/蛋白质比（DOS）（见说明书）。
3.6运行上述4种结合物的功能测试，确定佳的染料/蛋白质比例，以扩大标记反应。
4.运行结合反应：
4.1有效加入适量的染料储备溶液（溶液B）到蛋白质溶液（溶液A）的小瓶中晃动。
注意：溶液B /溶液的佳摩尔比由步骤3.6确定。如果跳过步骤3，我们建议使用10：1溶液B（染料）/溶液A（蛋白质）的摩尔比。
4.2继续在室温下旋转或摇动反应混合物30-60分钟。
5.纯化缀合物
以下方案是使用Sephadex G-25柱纯化染料 - 蛋白质缀合物的实例。
5.1按照制造说明准备Sephadex G-25色谱柱。
5.2将反应混合物（直接从步骤4）加载到Sephadex G-25柱的顶部。
5.3样品在顶部树脂表面下方运行时立即加入PBS（pH 7.2-7.4）。
5.4向所需样品中加入更多PBS（pH 7.2-7.4）以完成色谱柱纯化。 合并含有所需染料 - 蛋白质缀合物的级分。
注1：立即使用时，染料 - 蛋白质偶联物需要用染色缓冲液稀释，并等分多次使用。
注2：对于长期储存，染料 - 蛋白质缀合物溶液需要浓缩或冷冻干燥
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文献和实验偶联物，最大限度的提高了信噪比。图2. CF染料的超强特异性；由于AF染料制备过程中含有大量带负电的磺化基团，容易非特异性结合正电基团，请看AF790 Dye与CF790的条带特异性对比。3. 优异的标记效率生物偶联后的活性染料一般很容易水解，会在运输，操作及储存中带来诸多不便，最终致染料结合效率低下。像Alexa Fluor® dyes,DyLight? dyes and IRDyes®等严重的磺化作用有较强的吸湿性，恶化水解作用等问题。例如： AlexaFluor® 488 在应用时琥珀酰亚胺脂酯
-------------------------------------- x100％ 添加椒目仁油中α-亚麻酸量 4 讨论 4．1 本实验对样品的处理方法进行探索，①用浓硫酸和甲醇直接酯化，由于大量结合于脂上的亚麻酸未能被酯化，故测出的含量偏低，不到20%；②酸水解后再酯化，未检出亚麻酸峰；③碱水解后再酯化，亚麻酸的峰与其他峰不能较好的分离；(4在碱性醇溶液中加热回流，测出的含量偏低，说明酯化不完全；改用酸性醇溶液回流，即本实验中所用方法，可将之完全酯化，且亚麻酸峰分离较好，故确定为样品处理方法。 4.2 实验中对样品酯化时的时间进行考察，少于30min
1. 引物是如何合成的？目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。 DNA 合成仪有很多种 , 主要都是由 ABI/PE 公司生产，而 Bioneer自行研制 的专利 384并行高通量 DNA合成仪， 可实现 99% 的高合成率。无论采用什么机器合成，合成的原理都相同，主要差别在于合成产率的高低，试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。亚磷酰胺三酯法合成 DNA 片段，具有高效、快速的偶联以及起始反应物比较稳定的特点。亚磷酰胺三酯法是将 DNA 固定在固相载体上完成
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