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细胞/细菌总RNA提取试剂盒

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  • ¥845
  • 康朗生物/KALANG
  • KL1061R
  • 中国
  • 2025年07月16日
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    • 英文名

      细胞/细菌总RNA提取试剂盒

    • 保质期

      室温保存

    • 供应商

      上海康朗生物科技有限公司

    • 保存条件

      2-8℃避光保存

    • 规格

      50次

    细胞/细菌总RNA提取试剂盒

    产品组分

    货号

    KL1061(50次)

    溶液RD

    30 ml

    溶液RB

    50 ml

    溶液RP

    30 ml

    溶液RW

    12 ml

    TE

    8 ml

    DEPC处理水

    10 ml

    溶菌酶(50 mg/ml)

    500 μl

    RNase-free 纯化柱

    50个

    RNase-free 离心管

    50个

    说明书

    1份

    需要自备的溶液

    ●  β-巯基乙醇

    ●  无水乙醇

     

    产品说明

    细胞/细菌总RNA提取试剂盒是经过改进开发的新一代产品,提高了裂解液的裂解能力和提取的灵敏度,通过在特定适宜的条件下特异、可逆地结合RNA,彻底去除各种蛋白质和其他杂质,从而使得到的RNA纯度更好,质量更高。该试剂盒可从各种培养细胞或菌体中快速提取总RNA,每个吸附柱每次可处理50–100 mg组织或5×106 细胞,可同时处理大量不同的样品,一个小时内即可完成反应。提取的总RNA没有DNA和蛋白的污染,可用于Real-time RT-PCR、Northern Blot、Dot Blot、polyA筛选、体外翻译、RNase保护分析和分子克隆等。

     

    保存条件

    溶菌酶和DEPC处理水-20℃保存,溶液RD、溶液RB和溶液RP 4℃保存,其他溶液和纯化柱室温保存。

     

    注意事项

    ●  操作前在溶液RD中加入β-巯基乙醇至终浓度为1%,如1 ml溶液RD中加入10 μl β-巯基乙醇。此裂解液最好现用现配。配好的溶液RD 4℃可放置一个月,溶液RD在储存时可能会形成沉淀,如果有沉淀出现,请加热溶解后使用。

    ●  第一次使用前应在溶液RW中加入无水乙醇,加入量为溶液RW:无水乙醇=1:4,即每12 ml溶液RW需要加入48 ml无水乙醇。

    ●  严防操作环境、使用的容器、耗材和试剂的RNase污染。操作过程中勤换手套。

    ●  使用本产品提取的RNA一般不含有DNA污染。在极少数情况下(与组织pH值等相关),如果有DNA污染而又必须去除,则可以用RNase-free的DNase处理样品。

    ●  请严格遵照操作步骤进行操作。

    ●  不同起始材料用量及预期RNA产率。

    细胞种类

    细胞最大用量

    最大用量时RNA得率

    COS

    3×106

    35 μg

    Hela

    7×106

    15 μg

    NIH/3T3

    1×107

    10 μg

     

    操作步骤

    操作前在溶液RD中加入β-巯基乙醇至终浓度为1%。

    第一次使用前应在溶液RW中加入无水乙醇,加入量请参考瓶上标签。

    1.  收集细胞/菌体

    ● 悬浮细胞的收集(收集细胞数量请不要超过1×107):估计细胞数量,300×g离心5 min,将细胞收集到离心管中,仔细吸除所有培养基上清。

    ● 单层贴壁细胞的收集(收集细胞数量请不要超过1×107):可直接在培养容器中裂解(容器直径不超过10 cm),或者使用胰蛋白酶处理后离心收集细胞沉淀。

    ● 菌体的收集(收集菌体数最大不超过1×109):4℃ 12,000 rpm离心2 min收集菌体,仔细去除所有培养基上清,用含有溶菌酶的100 μl TE彻底重悬菌体,孵育时间见下表。

    细菌种类

    TE缓冲液中溶菌酶的浓度

    孵育时间(室温)

    G-细菌

    400 μg/ml

    3-5 min

    G+细菌

    3 mg/ml

    5-10 min

    以下的所有离心步骤均在室温(20-25℃)进行。

    2.  加入350 μl溶液RD(在使用前请加入β-巯基乙醇),涡旋振荡混匀,若出现不溶性沉淀,12000 rpm离心2 min,将上清转移至另一离心管中。

    3.  加入700 μl溶液RB,混匀(此时可能会出现沉淀)。将得到的溶液和沉淀一起转入纯化柱(纯化柱+收集管)中,12,000 rpm离心30-60 s,倒掉废液,将纯化柱放回收集管中。

    4.  向纯化柱中加入350 μl溶液RP,12,000 rpm离心30-60 s,弃废液,将纯化柱放回收集管中。

    5.  向纯化柱中加入500 μl溶液RW(使用前请先检查是否已按1:4加入无水乙醇,即含80%乙醇),室温静置2 min,12,000 rpm离心30 s,弃废液,将纯化柱放回收集管中。

    6.  重复上步操作。

    7.  将纯化柱放回收集管中,12,000 rpm继续空离2 min,去除残余液体,将纯化柱置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。

    ●  此步骤目的是将纯化柱中残余的漂洗液去除,离心后将纯化柱在室温放置片刻,或置于超净工作台上通风片刻,以充分晾干。如果有漂洗液残留,可能会影响后续的RT等实验操作。

    8.  将纯化柱转入一个新的1.5 ml离心管(RNase-free)中,加30–100 μl RNase-free ddH2O(DEPC处理水),室温放置2 min,12,000 rpm离心2 min。

    ●  洗脱缓冲液体积不应少于30 μl,体积过小影响回收效率。且RNA应保存在-70℃,以防降解。

    ●  如果想提高RNA得率,可重复上步操作一次,合并两次得到的溶液。

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