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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
大量
- 英文名:
AGL1 Chemically Competent Cell
- 保质期:
-80℃(6个月)
- 供应商:
上海沪震实业有限公司
- 保存条件:
-80℃(6个月)
AGL1 Chemically Competent Cell 产品说明书
产品规格
AGL1: 100μl/支
pCAMBIA2301(control vector,10ng/μl ) 10μl
保存条件(保质期): -80℃(12个月)
基因型
C58 RecA (rifR/carbR) Ti pTiBo542DT-DNA Succinamopine
产品说明
AGL1菌株为C58, RecA型背景,核基因中含有筛选标签——利福平抗性基因rif和羧苄青霉素抗性基因carb,为了便于转化操作,此菌株携带一无自身转运功能的琥珀碱型Ti质粒 pTiBo542DT-DNA,此质粒含有vir基因(vir基因是T-DNA插入植物基因组必需的元件, pTiBo542DT-DNA质粒自身的T-DNA转移功能被破坏,但可以帮助转入的双元载体T-DNA顺利转移)。AGL1菌株适用于水稻、拟南芥、杨树等植物的转基因操作。本公司生产的AGL1化学转化感受态细胞经特殊工艺制作,pCAMBIA2301质粒检测转化效率>104 cfu/μg DNA。
操作方法
1. 取-80℃保存的农杆菌感受态于室温或手心片刻待其部分融化,处于冰水混合状态时插入冰中。
2.每100 μl感受态加入0.01-1 μg质粒DNA(转化效率较高,第一次使用前最好做预实验确定所加质粒的量),用手拨打管底混匀,依次于冰上静置5分钟、液氮5分钟、37℃水浴5分钟、冰浴5分钟。
3. 加入700 μl无抗生素的LB或YEB液体培养基,于28℃振荡培养2~3小时。
4. 6000 rpm离心一分钟收菌,留取100 μl左右上清轻轻吹打重悬菌块涂布于含相应抗生素的LB或YEB平板上,倒置放于28℃培养箱培养2-3天
(当平板只含有50 μg/ml kan 时,28℃培养48 h即可;平板中同时加入50 μg/ml kan,20 μg/ml rif 时,需28℃培养60 h;如果使用的平板含有50 μg/ml rif 则需要28℃培养72-90 h)。
注意事项
1. 加入质粒时体积不应大于感受态体积的1/10 ;质粒不纯或存在乙醇等有机物污染,转化效率急剧下降;质粒增大一倍,转化效率下降一个数量级。
2. 混入质粒时应轻柔操作。转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量。
3. 平板上阳性克隆密度过大时,由于营养不足,阳性克隆生长变慢,菌落变小,为了获得大的菌落,应减少质粒用量。
4. 利福平浓度不应高于25 μg/ml,过高的利福平浓度不利于农杆菌生长,会降低其生长速度和转化效率。本公司感受态计算转化效率时所用平板只含有50 μg/ml kan,若所用平板含有20 μg/ml rif则转化效率降低到1/2。
5. 培养基中加入利福平的目的是防止杂菌生长、筛选农杆菌;根据所用菌株抗性加入Ti质粒筛选抗生素可防止Ti质粒丢失,但Ti质粒筛选抗生素不利于农杆菌的转基因操作,所以一般培养农杆菌时不考虑这些抗生素,Ti质粒丢失的概率极低 (可以忽略)。
备注
1、农杆菌相关抗生素配方:
| 抗生素 | 配方 | 原液 | 工作液 |
| 羧苄青霉素(carb) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 50 mg/ml | 50 μg/ml |
| 硫酸卡那霉素(kan) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 50 mg/ml | 50 μg/ml |
| 链霉素(strep) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 10 mg/ml | 50 μg/ml |
| 利福平(rif) | DMSO溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 10 mg/ml | 20 μg/ml |
| 庆大霉素(gent) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 20 mg/ml | 40 μg/ml |
2、常用农杆菌抗性:(R:抗;S:敏感。)
| 农杆菌菌株 | 羧苄青霉素(carb) | 链霉素(strep) | 利福平(rif) | 庆大霉素(gent) | 硫酸卡那霉素(kan) |
| AGL-1 | R | S | R | S | S |
| EHA101 | S | S | R | S | R |
| EHA105 | S | S | R | S | S |
| LBA4404 | S | R | R | S | S |
| GV3101 | S | S | R | R | S |
3、LB及YEB配方:
产品规格 (CAT#: AC1020)
AGL1: 100μl/支
pCAMBIA2301(control vector,10ng/μl ) 10μl
保存条件(保质期): -80℃(12个月)
基因型
C58 RecA (rifR/carbR) Ti pTiBo542DT-DNA Succinamopine
产品说明
AGL1菌株为C58, RecA型背景,核基因中含有筛选标签——利福平抗性基因rif和羧苄青霉素抗性基因carb,为了便于转化操作,此菌株携带一无自身转运功能的琥珀碱型Ti质粒 pTiBo542DT-DNA,此质粒含有vir基因(vir基因是T-DNA插入植物基因组必需的元件, pTiBo542DT-DNA质粒自身的T-DNA转移功能被破坏,但可以帮助转入的双元载体T-DNA顺利转移)。AGL1菌株适用于水稻、拟南芥、杨树等植物的转基因操作。本公司生产的AGL1化学转化感受态细胞经特殊工艺制作,pCAMBIA2301质粒检测转化效率>104 cfu/μg DNA。
操作方法
1. 取-80℃保存的农杆菌感受态于室温或手心片刻待其部分融化,处于冰水混合状态时插入冰中。
2.每100 μl感受态加入0.01-1 μg质粒DNA(转化效率较高,第一次使用前最好做预实验确定所加质粒的量),用手拨打管底混匀,依次于冰上静置5分钟、液氮5分钟、37℃水浴5分钟、冰浴5分钟。
3. 加入700 μl无抗生素的LB或YEB液体培养基,于28℃振荡培养2~3小时。
4. 6000 rpm离心一分钟收菌,留取100 μl左右上清轻轻吹打重悬菌块涂布于含相应抗生素的LB或YEB平板上,倒置放于28℃培养箱培养2-3天
(当平板只含有50 μg/ml kan 时,28℃培养48 h即可;平板中同时加入50 μg/ml kan,20 μg/ml rif 时,需28℃培养60 h;如果使用的平板含有50 μg/ml rif 则需要28℃培养72-90 h)。
注意事项
1. 加入质粒时体积不应大于感受态体积的1/10 ;质粒不纯或存在乙醇等有机物污染,转化效率急剧下降;质粒增大一倍,转化效率下降一个数量级。
2. 混入质粒时应轻柔操作。转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量。
3. 平板上阳性克隆密度过大时,由于营养不足,阳性克隆生长变慢,菌落变小,为了获得大的菌落,应减少质粒用量。
4. 利福平浓度不应高于25 μg/ml,过高的利福平浓度不利于农杆菌生长,会降低其生长速度和转化效率。本公司感受态计算转化效率时所用平板只含有50 μg/ml kan,若所用平板含有20 μg/ml rif则转化效率降低到1/2。
5. 培养基中加入利福平的目的是防止杂菌生长、筛选农杆菌;根据所用菌株抗性加入Ti质粒筛选抗生素可防止Ti质粒丢失,但Ti质粒筛选抗生素不利于农杆菌的转基因操作,所以一般培养农杆菌时不考虑这些抗生素,Ti质粒丢失的概率极低 (可以忽略)。
备注
1、农杆菌相关抗生素配方:
| 抗生素 | 配方 | 原液 | 工作液 |
| 羧苄青霉素(carb) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 50 mg/ml | 50 μg/ml |
| 硫酸卡那霉素(kan) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 50 mg/ml | 50 μg/ml |
| 链霉素(strep) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 10 mg/ml | 50 μg/ml |
| 利福平(rif) | DMSO溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 10 mg/ml | 20 μg/ml |
| 庆大霉素(gent) | 双蒸水溶解,0.22 μm滤膜过滤除菌 | 20 mg/ml | 40 μg/ml |
2、常用农杆菌抗性:(R:抗;S:敏感。)
| 农杆菌菌株 | 羧苄青霉素(carb) | 链霉素(strep) | 利福平(rif) | 庆大霉素(gent) | 硫酸卡那霉素(kan) |
| AGL-1 | R | S | R | S | S |
| EHA101 | S | S | R | S | R |
| EHA105 | S | S | R | S | S |
| LBA4404 | S | R | R | S | S |
| GV3101 | S | S | R | R | S |
3、LB及YEB配方:
| component | LB(液体)/L | LB(固体)/L | component | YEB(液体)/L | YEB(固体)/L |
| Tryptone | 10 g | 10 g | Tryptone | 5 g | 5 g |
| Yeast extract | 5 g | 5 g | Yeast extract | 1 g | 1 g |
| NaCl | 10 g | 10 g | 牛肉浸膏 | 5 g | 5 g |
| NaOH | 调PH到7.0 | 调PH到7.0 | 蔗糖 | 5 g | 5 g |
| Agar | - | 15 g | MgSO4*7H2O | 0.49 g | 0.49 g |
| NaOH | 调PH到7.0 | 调PH到7.0 | |||
| Agar | - | 15 g |
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文献和实验7 的缓冲液来洗脱;洗脱液提前预热至 65℃ 也可以提高洗脱效率。 3. 提取质粒转化大肠杆菌效率低 大肠杆菌转化效率受到多种因素的影响,例如感受态细胞状态,转化方式及操作(电转或热激),质粒用量,质粒质量等等。从感受态角度优化,可以考虑感受态本身的状态,比如贮存时间、贮存方式不当会导致感受态转化效率明显降低,此外热激条件也会影响感受态转化效率,建议热激时间严格按照感受态类型或说明书操作。从质粒角度优化,可以进一步确认质粒用量,质粒浓度,质粒是否降解等。 4. 提取质粒转染细胞效率低
,以下一些注意事项希望能帮大家节省时间直接省略T载体构建一步成功。线性化载体的时候,最好验证过载体是没有问题的,通常我们单酶切或双酶切的时候要注意内切酶的buffer是否没有用错,一般根据说明书再延长一些时间会使线性化更加彻底,增加载体构建的阳性率,3. 连接反应一般载体与目的片段的比例推荐1:1到1:4,使用nanodrop进行定量,通常根据紫外灯通过亮度对比也是可以的,连接反应的时候最好在冰上操作,此步要操作轻柔,载体和片段连接酶之类的加入要混匀,PCR上机反应4. 转化转
10×连接酶Buffer 1 μl 加水补足 10 μl 接连反应条件和时间参照您购买的连接酶说明书进行。 为了减少空载体自连,连接反应完成后,在连接反应体系中加入1 μl BglII,37 ℃反应30 min,切割连接上的空载体。(选做) 步骤4:转化大肠杆菌感受态 用连接后产物转化大肠杆菌感受态细胞。市场上常见的大肠杆菌感受态细胞(例如Top10,DH5-α)均可以使用,您也可以按照分子克隆中的方法自己制备感受态细胞。转化
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