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50 rxns
MycoplasmaFree支原体检测试剂盒说明书
研究表明,至少二十多种支原体能污染细胞,其中最常见的有:口腔支原体、精氨酸支原体、猪鼻支原体、发酵支原体、人型支原体、唾液支原体、肺支原体等。培养细胞的支原体污染率在4%-92%不等,其污染来源包括工作环境、操作者本身(一些支原体是人体的正常菌群)、培养基、血清、细胞交叉污染、实验器材和用来制备细胞的原始组织或器官的污染。
Fubio支原体检测试剂盒主要采用PCR方法对各种生物材料(如细胞培养物、实验动物分泌物、动物血清等)支原体感染的检测。本试剂盒综合了几个优势:灵敏、特异、快速并且可以用直接用细胞培养上清液检测。本制品通过PCR方法检测培养细胞等生物材料中的支原体,所用引物为根据支原体16S rRNA序列保守区域设计,只特异性扩增支原体DNA,检出灵敏度与特异性均较高。PCR扩增及电泳分析只需数个小时,操作方便简单。
本试剂盒可检测所用的莱氏无胆甾原体、支原体、螺原体等120余种亚种。
(1)将待检细胞换成无抗生素的完全培养基,至少培养3天以上且融合度达70%-90%。
(2)收集1ml细胞上清液, 1500 rpm离心5min , 取离心后的上,900µL转移到新EP管中再从900μL中吸取100μL留存备用。
(3)将步骤(2)中900μl再次使用12000rpm离心10min,弃去上清,用50ul Nuclease-Free H2O重悬。
(4)将步骤(3)中重悬样品用95'C:沸水浴中煮5min,用于支原体检测。
2.PCR体系配制
(1)按照下面PCR体系配置PCR预混体系(25µ1/反应):
注意:添加模板时,应减少空气流动,注意交叉污染;因PCR反应极其灵敏,为防止出现假阳性结果,建议加样时最后加阳参。
(2) 加完所有待检样品后,振荡器上混匀,简短离心后,进行PCR扩增,反应程序如下:
3.PCR 产物的电泳检测
(1) 配置1%的琼脂糖凝胶,稍冷后加入核酸染料 , 注入凝胶模中,冷却凝固后,即可用于电泳。
(2) 在每管PCR产物中加入loading Buffer , 取8-10µL进行上样,Marker样5-10µL。
(待) 电泳:130V电泳30min (根据电泳仪情况,适当调整时间)。
(3) 电泳结束后取出凝胶千成像仪上抇照,并保存。
4. 结果判断
产物大小在370bp左右。
2. 实验时,试剂盒中的每种试剂在使用前应充分融化,并上下颠倒多次以充分混匀,请勿激烈振荡。
3. 反应管中加好所有的试剂后,应尽快上PCR仪进行扩增,以免形成过多的二聚体。
5结果异常时,建议复检。
6结果为弱阳性时,建议将100μL留存上清继续培养3-4天,再次检测。
本产品仅供科研用途!
- 产品信息
| 产品名称 | 产品编号 | 产品规格 | 储存条件 |
| MycoplasmaFree支原体检测试剂盒 | FBMC002 | 10 rxns | -20 ℃ |
| MycoplasmaFree支原体检测试剂盒 | FBMC003 | 20 rxns | -20 ℃ |
| MycoplasmaFree支原体检测试剂盒 | FBMC004 | 50 rxns | -20 ℃ |
- 产品描述
研究表明,至少二十多种支原体能污染细胞,其中最常见的有:口腔支原体、精氨酸支原体、猪鼻支原体、发酵支原体、人型支原体、唾液支原体、肺支原体等。培养细胞的支原体污染率在4%-92%不等,其污染来源包括工作环境、操作者本身(一些支原体是人体的正常菌群)、培养基、血清、细胞交叉污染、实验器材和用来制备细胞的原始组织或器官的污染。
Fubio支原体检测试剂盒主要采用PCR方法对各种生物材料(如细胞培养物、实验动物分泌物、动物血清等)支原体感染的检测。本试剂盒综合了几个优势:灵敏、特异、快速并且可以用直接用细胞培养上清液检测。本制品通过PCR方法检测培养细胞等生物材料中的支原体,所用引物为根据支原体16S rRNA序列保守区域设计,只特异性扩增支原体DNA,检出灵敏度与特异性均较高。PCR扩增及电泳分析只需数个小时,操作方便简单。
本试剂盒可检测所用的莱氏无胆甾原体、支原体、螺原体等120余种亚种。
- 产品组分
| 组分名称 | 组分说明 | 规格 |
| Reaction Mix | 酶、引物混合物 | 100μl/200μl/500μl |
| Positive control | 阳性对照 | 30μl /60μl/150μl |
| Negative control | 阴性对照 | 30μl /60μl/150μl |
| Nuclease-Free H2O | 无核酸水 | 500μl/1 ml/2.5ml |
- 运输与储存
- 保质期
- 操作步骤
(1)将待检细胞换成无抗生素的完全培养基,至少培养3天以上且融合度达70%-90%。
(2)收集1ml细胞上清液, 1500 rpm离心5min , 取离心后的上,900µL转移到新EP管中再从900μL中吸取100μL留存备用。
(3)将步骤(2)中900μl再次使用12000rpm离心10min,弃去上清,用50ul Nuclease-Free H2O重悬。
(4)将步骤(3)中重悬样品用95'C:沸水浴中煮5min,用于支原体检测。
2.PCR体系配制
(1)按照下面PCR体系配置PCR预混体系(25µ1/反应):
| 体系组分 | 体积(每反应) |
| Reaction Mix | 10 μl |
| 样品/ control | 3 μl |
| 超纯水 | 12 μl |
| 25μl |
(2) 加完所有待检样品后,振荡器上混匀,简短离心后,进行PCR扩增,反应程序如下:
| 温度 | 94℃ | 94℃ | 60℃ | 72℃ | 72℃ | 4℃ |
| 时间 | 5 min | 30 S | 30 S | 30 S | 10 min | ∞ |
| 循环数 | 1 | 35 | 1 | 1 | ||
3.PCR 产物的电泳检测
(1) 配置1%的琼脂糖凝胶,稍冷后加入核酸染料 , 注入凝胶模中,冷却凝固后,即可用于电泳。
(2) 在每管PCR产物中加入loading Buffer , 取8-10µL进行上样,Marker样5-10µL。
(待) 电泳:130V电泳30min (根据电泳仪情况,适当调整时间)。
(3) 电泳结束后取出凝胶千成像仪上抇照,并保存。
4. 结果判断
产物大小在370bp左右。
- 注意事项
2. 实验时,试剂盒中的每种试剂在使用前应充分融化,并上下颠倒多次以充分混匀,请勿激烈振荡。
3. 反应管中加好所有的试剂后,应尽快上PCR仪进行扩增,以免形成过多的二聚体。
5结果异常时,建议复检。
6结果为弱阳性时,建议将100μL留存上清继续培养3-4天,再次检测。
本产品仅供科研用途!
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