单格抗体孵育盒

石蜡切片免疫组化实验步骤

。 将修复盒从微波炉中拿出，自然冷却降温，当修复液降至室温后取出玻片，PBS（pH 7.4）冲洗3遍，每次3 min（冲洗过程中切勿对着组织冲洗，以免弄破组织）。 灭活 将配制好的 3 %的过氧化氢（去离子水稀释30%过氧化氢）滴加于切片组织上以阻断内源性过氧化物酶，室温孵育15 min，PBS 冲洗 3 次，每次 3 min。 抗体孵育 吸水纸吸干 PBS，在玻片上滴加 5%的正常血清（与二抗种属来源一致或相似），37 ℃封闭 30 min。 用吸水纸擦干玻片组织周围的液体，用油

免疫组化技术实用案例课程：第一期

案例一：DAB染色后切片着色一片黄/背景深 背景：奥运会期间我们课题组研究生都在实验室做实验，许多从北京购买的试剂买不到，对我们的许多实验产生了很大的影响。 我以前一直用中杉金桥的Sp三步法染色试剂盒，效果不错，在奥运会期间我准备做同批实验分不同批次酶免疫组化实验，第一批组化实验结果很好，抗体浓度感觉比较合适（Santa Cruz公司1：200），等做第二批时发现封闭血清不够了，为了保证实验顺利进行，我又从福州迈新顶了一个SP试剂盒，同时抗体稀释液也不够了，我又重新从博士

免疫组化实用案例第二课

性好；一抗的species reactivity中无检测组织的种属，这是比较常见的错误；一抗选择rat，而二抗是抗mouse/rabbit等均有可能出现阴性结果。 （2）抗体孵育时间过短，容易导致阴性结果。一般一抗我建议4度孵育过夜和37度复温45min；二抗我一般37度30min。我不喜欢参照二抗染色试剂盒说明书。 （3）抗体浓度过低。这是阴性结果的最可能原因。必须提高稀释度，我一般初次做一种新抗体，喜欢先用说明书建议的低浓度和高浓度做一次，然后决定是向高还是低方向摸索。一般先决定二抗