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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
-20℃
- 保质期:
6个月
- 英文名:
Shikimic acid Dehydrogenase(SD) Activity Assay Kit
- 库存:
99
- 供应商:
北京索莱宝科技有限公司
- CAS号:
BC4165-100T/96S
- 规格:
50管/48样
莽草酸脱氢酶(SD)活性检测试剂盒说明书
紫外分光光度法
货号: BC4180
规格: 50T/48S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
| 试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
| 提取液 | 液体60 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 试剂一 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 试剂二 | 粉剂×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 试剂三 | 粉剂×2瓶 | -20℃保存 |
- 提取液:内含不溶物,用前摇匀。
- 试剂二:临用前加入10 mL蒸馏水溶解。
- 试剂三:临用前每瓶加入11 mL蒸馏水溶解。
- 工作液的配制:根据用量按照试剂一:试剂二:试剂三为7:4:8的体积比例充分混匀,现用现配,用前25℃预热15min。
莽草酸途径是存在于植物和微生物中的一条重要的代谢途径,莽草酸脱氢酶(EC 1.1.1.25) 是莽草酸合成代谢途径中催化第四步反应的关键酶。
莽草酸脱氢酶催化莽草酸和NADP产生NADPH,检测340nm下的吸光值增加速率来表示SD活性。
Shikimic Acid +NADP NADPH(340nm)
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、1mL石英比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液(加入前摇匀))进行冰浴匀浆,然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。
2、细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。
3、液体:直接检测。
二、测定步骤具体操作步骤详见“产品资料”附件
- 紫外分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
- 工作液25℃预热10min以上。
- 操作表:在1mL石英比色皿中分别加入下列试剂:
| 试剂名称 | 空白管 | 测定管 |
| 工作液(µL) | 950 | 950 |
| 样本(µL) | - | 50 |
| 蒸馏水(µL) | 50 | - |
| 加入样本即开始计时,充分混匀后于340nm处测定20s时的吸光值A1和5min20s时的吸光值A2,计算ΔA测定管=A2测定-A1测定,ΔA空白管=A2空白-A1空白,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管(空白管只需做1-2次)。 | ||
注意事项:
- 样本提取上清液置于冰上待测,且样本提取完成后建议2h内测完。
- 样本的蛋白浓度需自行测定,由于提取液中含有一定浓度的蛋白(约1mg/mL),所以测定样本蛋白浓度时需扣除提取液自身蛋白浓度。
- ΔA大于1时,建议将样本稀释后再进行测定。当ΔA小于0.01时,可以延长反应时间(10min或15min)来测定。
- 空白管为检测各试剂组分质量的检测孔,正常情况下,变化不超过0.01。
- 取0.1g萝卜叶,加入1mL提取液,进行样本处理,取上清按照测得步骤操作,测得计算ΔA测定管=A2测定-A1测定=1.441-1.201=0.24,ΔA空白管=A2空白-A1空白=0,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管=0.24,按照样本质量计算得:SD酶活(U/g 质量)=643×ΔA÷W=1543.2 U/g 质量。
BC2030/BC2035 异柠檬酸裂解酶(ICL)活性检测检测试剂盒
BC3170/BC3175 乙酸激酶(ACK)活性检测试剂盒
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文献和实验BC2030/BC2035 异柠檬酸裂解酶(ICL)活性检测检测试剂盒
BC3170/BC3175 乙酸激酶(ACK)活性检测试剂盒
度。 (2) 吸收系数法 按各品种项下的方法配制供试品溶液,在规定的波长处测定其吸收度,再以该品种在规定条件下的吸收系数计算含量。用本法测定时,应注意仪器的校正和检定。 (3) 计算分光光度法 采用计算分光光度法应慎重。本法有多种,使用时均应按各品种项下规定的方法进行。当吸收度处在吸收曲线的陡然上升或下降的部位测定时,影响精度的因素较多,故对照品和供试品测试条件应尽可能一致。若测定时不用对照品,如维生素A测定法,则应在测定时对仪器作仔细的校正和检定。
蛋白的考马斯亮兰溶液连续进样6次,得到吸光度的相对标准偏差。表1 精密度测定结果 2.3 稳定性 取1mg/ml牛 血清 蛋白标准溶液每十分钟测定一次,50分钟内的吸光度变化如下表2。表2 稳定度测定结果 3. 结论该方法测定快速、简便,干扰物少,是目前灵敏度较高的蛋白质含量测定的紫外分光光度法。
【 实验目的 】 学习紫外分光光度法测定核酸含量的原理和操作方法 【 实验原理 】 核酸、核苷酸及其衍生物都具有共轭双键系统,能吸收紫外光,RNA和DNA的紫外吸收峰在260nm波长处。一般在260nm波长下,每1ml含1µg RNA溶液的光吸收值为0.022~0.024,每1m1含1µg DNA溶液的光吸收值约为0.020,故测定未知浓度RNA或DNA











