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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
258
- 英文名:
Magnetic Serum/Plasma DNA Maxi Extraction Kit
- 保质期:
12个月
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
室温(15-30℃)
- 规格:
2ml×50次|2ml×200次|2ml×1000次
特别提示:包括游离核酸大量提取试剂盒(磁珠法)在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:游离核酸大量提取试剂盒(磁珠法)
英文名称:Magnetic Serum/Plasma DNA Maxi Extraction Kit
产品货号:WH0116
产品规格:2ml×50次|2ml×200次|2ml×1000次
本试剂盒采用具有独特分离作用的磁珠和独特的缓冲液系统,从2-5ml体积血清、血浆等样本中分离纯化高质量游离DNA。独特包埋的磁珠,在一定条件下对核酸具有很强的亲和力,而当条件改变时,磁珠释放吸附的核酸,能够达到快速分离纯化核酸的目的。整个过程安全、便捷,提取的游离核酸得率高、纯度高,质量稳定可靠,尤其适合高通量工作站的自动化提取。
产品特点:
·本试剂盒即可满足手工提取也可适用于多种高通量平台批量提取。
·本试剂盒所得产物满足下游各类检测实验以及NGS分析。
·本产品适用于2-5ml体积的血清血浆样本。
试剂盒组成:
| 组分 | 2ml×50次 | 2ml×200次 |
| 裂解液GHH | 2×80ml | 4×160ml |
| 缓冲液GDF | 36ml | 150ml |
| 漂洗液PWG | 20ml | 2×40ml |
| Proteinase K | 10ml | 4×10ml |
| 磁珠悬浮液E | 2×750μl | 6×1ml |
| 洗脱缓冲液TBC | 15ml | 30ml |
储存条件:室温(15-30℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,以溶解沉淀。
注意事项:(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。)
1.样品应避免反复冻融,否则会导致提取的核酸片段较小且提取量降低。
2.若裂解液GHH中有沉淀,可在室温中重新溶解,摇匀后使用。
3.本试剂盒组分以2 ml样本为基础,如果提取其它规格的样本,试剂不够时需另行购买。
4.第一次使用试剂盒时,请按照试剂瓶上的提示在缓冲液GDF和漂洗液PWG中添加无水乙醇。
Carrier RNA溶液的配制(选购,货号RT416-02):
Carrier RNA是一种核酸捕获物,当样本中核酸含量较低时,使用Carrier RNA可以提高游离核酸提取效率。
向装有310μg Carrier RNA冻干粉的管子中加入310μl RNase-Free ddH2O,将Carrier RNA彻底溶解,得到终浓度为1μg/μl的溶液,并按实验情况分装到RNase-Free的离心管中,置于-20℃储存。使用时按照提取的次数取出相应的溶液,该溶液应避免反复冻融,冻融次数不能超过3次。
操作步骤:
使用前请先在缓冲液GDF和漂洗液PWG中加入无水乙醇,加入体积参照瓶上的标签。
1.根据样品体积按下表选择合适规格的离心管,依次加入血浆、裂解液、Proteinase K和1μl Carrier RNA(选购,目录号RT416-02)。
| 样品量 | 耗材规格 | 裂解液CFL | Proteinase K | 磁珠WD |
| 1ml | 5ml离心管 | 1.5ml | 100μl | 25μl |
| 2ml | 5ml离心管 | 3ml | 200μl | 30μl |
| 3ml | 15ml离心管 | 4.5ml | 300μl | 45μl |
| 4ml | 15ml离心管 | 6ml | 400μl | 60μl |
| 5ml | 15ml离心管 | 7.5ml | 500μl | 75μl |
注意:本试剂盒以2 ml样本为基础,如果提取其它规格的样本,请按照表格中的用量进行增减。
2.涡旋振荡混匀后室温孵育20min,期间每3-5 min上下颠倒混匀10 sec,使磁珠和核酸充分结合。孵育结束后需简短离心以去除管盖内壁的液滴。
3.将离心管置于磁力架上2 min,待磁珠完全吸附时用移液器小心去除液体,取下离心管。
4.加入750 μl缓冲液GDF(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),上下颠倒混匀30 sec使磁珠充分悬浮,简短离心以去除管盖内壁的液滴。
注意:可将步骤4中所有磁珠及液体转移至1.5ml规格磁力架进行后续操作。如果离心管壁上有残留磁珠,可以再加入200 μl缓冲液GDF漂洗,然后一并转移到1.5ml离心管中。
5.将离心管置于磁力架上1 min,待磁珠完全吸附时用移液器小心去除液体,取下离心管。
6.加入750 μl漂洗液PWG(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),上下颠倒混匀30 sec使磁珠充分悬浮,简短离心以去除管盖内壁的液滴。
7.将离心管置于磁力架上1 min,待磁珠完全吸附时用移液器小心去除液体,取下离心管。
8.重复步骤6和7一次。
9.将离心管置于磁力架上,室温晾干5-10 min。
注意:乙醇残留会抑制后续的酶反应,所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥太长时间,以免难以洗脱核酸。
10.加入25-65 μl洗脱缓冲液TBC,用移液器吹吸使磁珠重新悬浮,56℃孵育5 min,期间每2min轻轻晃动使核酸充分洗脱。
11.将离心管放置于磁力架上静置2 min,待磁珠完全吸附时小心将核酸溶液转移至新的离心管中,并于适当条件保存。
除了游离核酸大量提取试剂盒(磁珠法),,我公司还供应以下相关产品:
名称:无内毒素质粒DNA大量提取试剂盒
货号:BTN81107
规格:5次
本试剂盒是整合大提质粒DNA提取试剂盒和菌体内毒素清除剂两产品而成。菌体内毒素清除剂是我司独家推出的产品,在质粒提取前就把细胞壁上的内毒素清除掉,彻底避免了目前通用的先提取DNA+内毒素混合物,再从中纯化质粒DNA的弊端。用本产品提取的质粒DNA,内毒素的污染浓度低,适合于转染等对内毒素的污染敏感的实验。
试剂盒特点:
1. 操作简单,只在经典的柱式质粒DNA提取前,增加菌体内毒素清除一步。
2. 去内毒素效果好,处理一次可以去除99%以上的内毒素。
3.质粒丢失少,产率只比柱式质粒DNA提取试剂盒低5-10%,效果好于先提质粒DNA,再用液相内毒素清除剂处理的方法。
4. DNA可以直接用于转染等实验。
试剂盒组成:
| 成分 | 规格 |
| 菌体内毒素清除剂 | 200ml |
| 溶液A | 25ml |
| 溶液B | 25ml |
| 溶液C | 35ml |
| RNase A溶液(10mg/mL) | 300μl |
| 吸附柱活化液 | 12.5ml |
| 大提离心吸附柱 | 5套 |
| 通用洗柱液 | 100ml |
| DNA洗脱液3.0 | 10ml |
| 说明书 | 1份 |
储存条件:RNase A溶液需4℃或-20℃保存,其余成分可室温保存,如有沉淀可加热溶解后再使用。
使用方法:
1. 用50mL塑料离心管收集不超过40mL的E.coli 饱和菌液,5000rpm离心5-10分钟,弃上清,得到细菌沉淀。
2. 加入10mL菌体内毒素清除剂,温和混匀后5000rpm离心5-10分钟,弃上清(含内毒素)。
3. 重复上述操作3次,得到的菌体将丢失了绝大部分细胞表面的内毒素。
4. 往细菌沉淀中加入5mL溶液A(第一次使用时需要将RNase A溶液全部加入并混合均匀,未用完的部分放4℃保存),充分振荡悬浮。注意:充分重悬细胞沉淀(无块状物)对于获得高的质粒产量十分重要。
5. 加5mL溶液B,温和翻转10 余次至透明。若混合液不透明,应减少细菌的用量或室温放臵5-10分钟直到裂解液变透明。注意: 避免剧烈振荡,否则细菌基因组DNA 将断裂为小片段,与质粒难以分离,污染质粒DNA。
6. 加入冰浴的7mL溶液C,颠倒混匀,冰上放臵10分钟。混合物中将有白色絮状物形成。注意不要过分振荡。
7.在等待期间,活化离心吸附柱。在离心吸附柱中加入2.5mL活化液,套上收集管后室温放臵2分钟,然后5000rpm离心2分钟,倒弃穿透液,再将吸附柱套上收集管后待用。活化后的离心吸附柱必须立即使用。如果不活化,质粒得率将低20-40%左右。
8. 6000rpm离心10分钟。如果离心管承受能力强,离心速度还可以适当提高以充分沉淀絮状物。
9. 将上步得到的上清液移入到大提离心吸附柱中,放入50mL收集管中。室温放臵5分钟左右以便让质粒DNA跟膜结合。
10. 6000rpm离心5分钟,质粒DNA 将与大提离心吸附柱中的膜结合。弃穿透液。
11. 将10mL通用洗柱液加入到离心吸附柱中,室温静臵2分钟后6000rpm离心5分钟,弃穿透液。
12. 重复上步一次。
13.室温6000rpm 空甩5分钟,弃穿透液。注意:此步很重要,不能跳过,否则残留乙醇会影响后续实验。
14. 将大提离心吸附柱放入一个干净的50mL塑料离心管中,加0.5mL DNA洗脱液3.0(洗脱液如加热到50-65℃效果更佳),室温静臵2分钟后6000rpm离心5分钟,收集液即是质粒DNA溶液。
15. 重复上步3-4次可洗脱更多的质粒DNA。DNA 洗脱液3.0 不够可以用TE或超纯水替代。
16. 合并所得质粒DNA,立即使用或-20℃储存。
注意事项:
1.细菌培养时间一般为12-16小时,但接种量大时应减少时间。过度培养会降低质粒的质量甚至导致质粒DNA突变。
2.注意溶液A:溶液B:溶液C的比例为5:5:7。若细菌量增大,需按比例放大这些溶液的使用量。
3.随菌体增多应延长溶液B的作用时间,直至溶液成粘稠透明状。但时间过长会导致质粒DNA变性。
4.加溶液C后形成的白色沉淀中有变性的蛋白质、细菌基因组DNA和细胞碎片,离心后应避免带入到后续处理中。
5.通用洗柱液洗涤离心柱后必须甩干一次,否则残留通用洗柱液中的乙醇会干扰后续实验。
6.质粒的具体产量跟细菌量、质粒拷贝数、质粒大小和操作规范程度密切相关。一般1.5mL 过夜培养菌体可收获约10μg高拷贝质粒。
7.纯化的质粒在电泳中表现为2-3 条带有时甚至为4-6 条带均属正常,未分开的环套质粒,易被误判为基因组DNA。
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文献和实验的效率大幅度提升。但是也出现了另一个问题,那就是在有限的样本量的前提下,我们如何能够抓取到痕量的核酸呢?以提取血清血浆样本中的游离核酸为例,常规的试剂盒很难处理这样的情况,需要试剂盒中配备一些特殊组份来捕捉这些游离核酸,并帮助其结合在柱膜上,所以大家在购买试剂盒的时候需要做好选择。 接下来就是洗脱或者溶解了,目前市面上所售的各种试剂盒大多采用硅基质膜,这种膜的特点是在高 pH 值条件下与核酸分离,所以我们如果不选择试剂盒中的洗脱液的话,我们可以用 pH 7.5-8.0 的水来代替
左右;针对干细胞、神经细胞等可以将浓缩倍数提升到 10 倍左右,因为这些细胞外泌体分泌量相对肿瘤细胞来说要少很多。 第四步外泌体提取: 方法 优点 缺点 超速离心法 提取量相对较大 一法适用多类样品 成本较低 操作复杂度高 耗时长 因离心管材质量高低,管壁吸附损失程度不同 同时检测的样品数量有限 需要超速离心机 外泌体提取试剂盒 操作简单 耗时较短 不需超速离心机 纯度较超速离心法高 单次处理体积偏小 文章来源:宇玫博生物
分析实验。 解决方案 1. 血液越新鲜越好,在血液收集管中使用 RNA 稳定试剂来保存 RNA。 2. 血液 RNA 提取本质上是白细胞 RNA 提取,使用 Ficoll-Hypaque 密度梯度离心法回收单核细胞。 3. 去除抗凝剂和酶抑制剂。 4. 可采用专门用于血液样本的 RNA 提取试剂盒(如:QIAamp RNA Blood Mini Kit,货号:52304),其中含有高效的红细胞裂解液,在有效裂解细胞的同时也能防止其中释放出的大量 RNase 对后续 RNA 提取的影响。
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