核桃源性成分检测PCR试剂盒

产品名称：核桃源性成分检测PCR试剂盒
产品规格：50T
产品价格：电询
产品存储：-20℃
产品来源：欢迎新老客户咨询 上海雅吉生物科技有限公司
核桃源性成分检测PCR试剂盒产品及特点：本试剂盒可用于检测食品或其他材料中是否有指标成分。现代食品加工工艺极大改变了食材原有的味道、气味、色泽、纹理和质地等特性，因此传统的感官鉴别技术已经无法对食材的真伪进行准确的鉴定。同时部分食材还有致敏性，因此基于基因检测的快速灵敏的食材来源检测技术将对食品监管和安全提供重要的保障。本产品就是为满足这一需求根据 PCR 原理开发的产品，它具有下列特点：
1.  即开即用，用户只需要提供样品 DNA。
2.  根据品种保守区域设计引物，能专一性地检测出样品中的指标成分，但不能检测其他非指标成分。
3.  荧光定量 PCR 检测，比常规 PCR 更加灵敏。
4.  快速，整个检测过程（按一个样品计）所需时间仅为 2.0 小时。
5.  一管式闭管操作，降低了交叉污染。
6.  提供阳性标准品，便于分析实验结果。
7.  对混合样品中指标成分的检测下限为 0.01%，对样品中指标成分的核酸检测下限为0.1ng/µL。
8.  本只能用于科研，足够 50 次 20uL 体系的荧光定量 PCR。
核桃源性成分检测PCR试剂盒规格及成分 
 成分                                                         规格
2×qPCR MagicMix                                0.5 mL（棕色）
荧光 PCR 专用模板稀释液                 1 mL（黄盖）
源性成分 PCR 引物混合液                     100 uL（白盖）  
源性成分 PCR 阳性对照                    50 uL（黄盖）
DNA 释放剂试用装                           50 次（成分见下）
免 DNA 提取试剂溶液 A 成分一      50 uL（白盖）
免 DNA 提取试剂溶液 A 成分二     100uL（绿盖）
免 DNA 提取试剂溶液 B                 400 uL（红盖）
使用手册                                               1 份
运输及保存：低温运输，-20℃保存，有效期一年。
使用本试剂盒提供的阳性对照时，由于其浓度较高，一定要注意不要污染其他试剂和成分。最好在专门的区域操作。
核桃源性成分检测PCR试剂盒自备试剂DNA 模板
使用方法一、稀释标准曲线样品（以 10E2-10E7 拷贝/μL 这 6 个 10 倍稀释度为例）。由于标准品浓度非常高，因此下列稀释操作一定要在独立的区域进行，千万不能污染样品或本试剂盒的其他成分）。为增加产品稳定性和避免扩散传染性病原，本产品不提供活体样品做阳性对照，只提供无传染性的 DNA 片段作为阳性对照。
1.标记 6 个离心管，分别为 7，6，5，4，3，2。
2.用带芯枪头分别加入 45 μL 荧光 PCR 专用模板稀释液，最好用带芯枪头，下同）。
3.在 7 号管中加入 5 μL 阳性对照（浓度为 1×10E8 拷贝/μL，试剂盒提供)，充分 震荡 1 分钟，得 1×10E7 拷贝/μL 的标准曲线样品。放冰上待用。
4.换枪头，在 6 号管中加入 5 μL 1×10E7 拷贝/μL 的阳性对照(上步稀释所得)， 充分震荡 1 分钟，得 1×10E6 拷贝/μL 的标准曲线样品。放冰上待用。
5.换枪头，在 5 号管中加入 5 μL 1×10E6 拷贝/μL 的阳性对照(上步稀释所得)， 充分震荡 1 分钟，得 1×10E5 拷贝/μL 的标准曲线样品。放冰上待用。
6.重复上面的操作直到得到 6 个稀释度的标准曲线样品。放冰上待用。 二、样品 DNA 的制备
7.用自选方法纯化样品的 DNA，本产品跟市场上绝大多数核酸纯化产品兼容。
8.如果有 N 个样品，则需要进行 N+2 个样品提取，多出的一个用作样品制备阳性对 照管、另一个用作样品制备阴性对照管。如果用本试剂盒自带的 DNA 释放 剂试用装。则按下面步骤操作：
9.配制溶液 A 工作液。以配制 1mL 工作液（足够 10 个样品）为例：在一干净塑料 管中加入 10uL 溶液 A 成分一，20uL 溶液 A 成分二和 970uL 超纯水，充分混合 均匀即可。溶液 A 工作液可室温放置，但最好在一周内用完，不要长期放置。一 次检测一个样品需要 100uL 溶液 A 工作液，1mL 工作液足够 10 个样品。如果待 测样品数量为其他数字，配制的溶液 A 工作液的体积需要做相应的调整。
10. 在标记好的 N+2 个离心管中，加入 1-5mg 固体样品（半粒芝麻大小）或 5uL 液 体样品待测样品。在样品制备阳性对照中加入 5uL 阳性对照，在样品制备阴性对 照中加入 5uL 水。
11. 在每个管中加入 100 uL 溶液 A 工作液，确保固体样品被溶液淹埋，如果是液体样 品则震荡混匀。
12. 95℃保温 10 分钟。
13. 待冷却到常温后加入 10uL 溶液 B 并混匀得 DNA 释放液。每个样品得到的 DNA
释放液足够进行 50-100 次 PCR。
三、设置 qPCR 反应（20μL 体系，在样品制备室进行）
14. 如果只做 1 次重复，则标记 N+9 个 PCR 管，其中 N+2 个用于上步得到的 N+2 个 样品，1 个用于 PCR 阴性对照，6 个用于标准曲线样品（也充当 PCR 阳性对照）。 如果做 2-3 次重复，则反应设置数量相应增加 2 或 3 倍。
15. 在标记管中按下表加入各成分（本表只列出一次重复。样品管和阴性对照设置完毕
后才设置阳性对照，并且阳性对照样品要等所有管子盖上盖子储存好后最后加）：
注:仅 ABI7500、7700 和 7900 仪器需要使用 ROX 作为对照，其他荧光 PCR 仪器（如 iCycler IQ、MJ Option、MJ Chromo4、MX3000、MX4000、RotorGene3000、RotorGene 6000 和 LightCycler480）不需要使用 ROX，则用水替代。
16. 盖上盖子后上机，按下面参数进行 qPCR（具体 PCR 参数可以根据 qPCR 仪器的不同而自行优化）。
核桃源性成分检测PCR试剂盒qPCR 反应参数

五、数据处理
17. 以阳性对照浓度的 log 值为横轴，以 Ct 值为纵轴，绘制标准曲线。再以待测样品的 Ct 值从标准曲线上推算出样品 DNA 浓度的 log 值，再推算出其浓度。
六、电泳检测
18. 如果有必要电泳确认，可取 10-20 uL PCR 产物直接在琼脂糖凝胶上电泳产物的大小为 216bp。开盖电泳验证容易污染实验环境，强烈不建议采用此方法。
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