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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 细胞类型:
原代细胞
- 组织来源:
见说明书
- 物种来源:
小鼠
- 器官来源:
见说明书
- 运输方式:
常温运输
- 生长状态:
优
- 规格:
5×10⁵cells/T25培养瓶
收到常温细胞后如何处理? 1、首先,观察细胞培养瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象。若有,请拍照,并及时与技术支持联系。 2、用75%酒精擦拭细胞培养瓶表面,显微镜下观察细胞状态。因运输问题,部分贴壁细胞会有少量从瓶壁脱落;先不要打开培养瓶盖,将细胞置于细胞培养箱内静置培养2-4小时,以便稳定细胞状态。 3、仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如贴壁特性(贴壁/悬浮)、细胞形态、所用基础培养基、血清比例、所需细胞因子、传代比例、换液频率等。 4、静置完成后,取出细胞培养瓶,镜检、拍照,记录细胞状态(所拍照片将作为后续服务依据);建议细胞传代培养后,定期拍照、记录细胞生长状态。 5、贴壁细胞:若细胞生长密度超过80%,可正常传代;若未超过80%,移除细胞培养瓶内培养基,预留5ml左右继续培养,直至细胞密度达80%左右再进行传代操作,瓶盖可稍微拧松。 6、悬浮细胞:将细胞培养瓶内液体全部转移至50ml无菌离心管内,1200rpm离心5min,离心后上清培养基可收集备用,管底细胞沉淀加入5ml培养基吹打、重悬。镜检时,若细胞密度超过80%,可将细胞悬液分至2个细胞培养瓶内培养,补加培养基至5ml;若细胞密度未超过80%,将细胞悬液移至原瓶继续培养,直至细胞密度达171%左右时再进行传代操作。
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文献和实验相关实验
操作演示
急性肾损伤(acute kidney injury,AKI)是临床上较为常见的急危重病症之一,常见于大手术后、创(烧)伤、危重病等患者中,可导致患者电解质紊乱、酸中毒及容量负荷过重,并最终可发展成为尿毒症。肾缺血再灌注(renal ischemiareperfusion,RIR)损伤是由各种原因导致的肾脏灌注不足所致,伴随着一系列连贯的细胞事件发生,包括活性氧 (ROS) 释放、凋亡、坏死、炎症细胞的浸润和活性介质的释放,从而导致组织损伤,常见于各种类型的休克、急性肾动脉阻断或肾脏移植等临床
实验材料: 1. 肾组织:取自8周龄健康雌性小鼠; 2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.2; 3. 0.1%明胶:为生长基质成分,在取材前先用它包被培养瓶的生长面; 4. 消化液:0.1%胰蛋白酶溶液; 5. 培养液:DMEM培养液,补充20%的胎牛血清、成纤维细胞生长因子(α-FGF)2µg/ml、庆大霉素100µg/ml、青霉素100IU/ml、链霉素100µg/ml; 6. 用于细胞
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小鼠肾实质细胞
¥3280




