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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
468
- 英文名:
Yeast Plasmid mini Extraction Kit
- 保质期:
12个月
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
室温(15-25℃)
- 规格:
50次
特别提示:包括酵母质粒小提试剂盒在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:酵母质粒小提试剂盒
英文名称:Yeast Plasmid mini Extraction Kit
产品货号:WH0039
产品规格:50次
本试剂盒对普通的碱裂解法进行了改进,可快速得到高纯质粒DNA,并祛除基因组DNA。通过离心吸附柱吸附、洗涤DNA,方便快速,不需使用有毒有害试剂,可同时处理多个样品。除适用于酵母细胞外,也可用于大肠杆菌。质粒得率与酵母菌株、质粒拷贝数、培养条件等因素有关。
试剂盒组成:
| 组分 | 50T |
| 平衡液BL | 30ml |
| 溶液YP1 | 15ml |
| 溶液YP2 | 15ml |
| 溶液YP3 | 20ml |
| 去蛋白液PD | 30ml |
| 漂洗液PW | 15ml |
| 洗脱缓冲液EB | 15ml |
| RNaseA(10mg/ml) | 150μl |
| 吸附柱CP2 | 50个 |
| 收集管(2ml) | 50个 |
保存条件:室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中预热10min,以溶解沉淀。溶液YP1加入RNase A后,应置于2-8℃,可稳定保存6个月。单独包装的RNase A可在室温保存12个月。
需要自备的试剂:Lyticase(目录号:WH0216),山梨醇buffer。
注意事项:(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1.溶液YP1使用前先加入RNaseA (将试剂盒中提供的RNase A全部加入),混匀,置于2-8℃保存。
2.使用前先检查平衡液BL、溶液YP2和YP3是否出现浑浊,如有混浊现象,可置于37℃水浴中加热几分钟,即可恢复澄清。
3.溶液YP2和YP3使用后应立即盖紧盖子。
4.所有离心步骤均为使用台式离心机室温下进行离心,速度为12000rpm (~13400×g )。
5.提取的质粒量与酵母菌的培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。
6.实验前使用平衡液处理吸附柱,可以zuì大限度激活硅基质膜,提高得率。
7.用平衡液处理过的柱子zuì好当天使用,放置时间过长会影响效果。
使用方法:
使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
1.柱平衡步骤:向吸附柱CP2中(吸附柱放入收集管中)加入500μl的平衡液BL,12000rpm(~13400×g )离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用当天处理过的柱子)
2.取1-5ml酵母培养物(不超过5×107酵母细胞),12000rpm (~13400×g )离心1 min,尽量吸除上清(菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中)。
3.酵母细胞壁的破除:
a、酶法:向菌体中加入300 μl山梨醇buffer,加入大约50U Lyticase,充分混匀,并在摇床上220rpm,30℃处理1h。4000 rpm(~1500×g)离心10min,弃上清,收集沉淀。加入250 μl溶液YP1(请先检查是否已加入RNase A)重悬沉淀。
注意:以上Lyticase的用量和处理时间为经验值,根据酵母菌株和酵母细胞数量的不同,所用Lyticase的浓度和孵育时间应该进行适当调整。
b、玻璃珠法:向菌体中加入250 μl溶液YP1(请先检查是否已加入RNase A)重悬沉淀,彻底悬浮菌体。加入0.1g直径为0.45-0.55mm的酸洗玻璃珠,涡旋振荡10min。
4.向管中加入250 μl溶液YP2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分混匀,室温放置5-10min。
注意:温柔混匀,不要剧烈震荡,以免污染基因组DNA。此时菌液应变得清亮粘稠。
5.向管中加入350 μl溶液YP3,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮状沉淀。12000rpm (~13400×g )离心20 min。
注意:YP3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
6.小心地将上清液加入吸附柱CP2中(吸附柱放入收集管中),12000rpm (~13400×g )离心1 min,倒掉废液,将吸附柱CP2放入收集管中。
7.向吸附柱CP2中加入500μl缓冲液PD,12000rpm (~13400×g )离心1 min,倒掉废液。
8.向吸附柱CP2中加入600 μl漂洗液PW(请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm(~13400×g )离心1 min,倒掉废液,将吸附柱CP2放入收集管中。
9.重复操作步骤8。
10.将吸附柱CP2放入收集管中置于12000rpm (~13400×g )离心2 min,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。
注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响,建议将吸附柱CP2开盖,置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
11.将吸附柱CP2置于一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位滴加50-100 μl洗脱缓冲液EB,室温放置2 min,12000rpm (~13400×g )离心2 min将质粒溶液收集到离心管中。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于50 μl,体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若后续做测序,需使用ddH2O做洗脱液,并保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为了增加质粒的回收效率,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,再次离心。
补充说明:
1.通常酵母质粒拷贝数都很低,一般通过电泳或者分光光度计法都很难检测到。提取的质粒如果用于下一步实验,通常建议使用量为:
可使用1-5 μl用作PCR模板。
可使用5-10 μl用于转化大肠杆菌。
2.转化大肠杆菌时应使用商业化高转化效率的感受态细胞,如我公司公司的目录号为WH0190和WH0189等产品。
除了酵母质粒小提试剂盒,,我公司还供应以下相关产品:
| 货号 | 名称 | 规格 |
| BTN70302 | 一步离心式石蜡清除剂 | 100次 |
| BTN71206 | 柱式动物DNA提取试剂盒 | 50次 |
| BTN91102 | 柱式骨骼DNA提取试剂盒 | 50次 |
| BTN70701 | 柱式病毒DNA提取试剂盒 | 50次 |
| BTN80201 | 一步法无内毒素质粒DNA提取试剂盒 | 50次 |
| WE0162 | 高纯质粒小提试剂盒 | 50次|200次 |
| WE0165 | 酵母质粒提取试剂盒 | 50次 |
| WE0170 | DNA产物快速纯化试剂盒 | 50次|200次 |
| ALH130 | 动植物基因组DNA快速提取试剂盒 | 50次|100次|200次 |
| ALH152 | 酵母基因组DNA快速提取试剂盒(柱式吸附) | 50次 |
| ALH170 | 粪便基因组DNA提取试剂盒 | 50次 |
| ALH089 | 高纯度质粒大量提取试剂盒(柱式提取质粒) | 10次 |
| RFT038 | 植物基因组DNA提取试剂盒 | 50次 |
| SY0001 | 蛋白酶K | 100mg |
| SY0010 | 1×STE Buffer(无菌) | 500ml |
| QN0929 | DNA产物纯化试剂盒 | 50T|100T |
| MT0044 | 细胞基因组DNA提取试剂盒(20分钟) | 50T |
| WH0021 | 海洋动物组织基因组DNA提取试剂盒(离心吸附柱法) | 50次|200次 |
| WH0034 | 微量质粒快速提取试剂盒 | 50次|200次 |
| WH0120 | 植物基因组DNA提取试剂盒(磁珠法) | 50次|200次 |
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文献和实验winniw214 小提的质粒(自己配的S1、S2和S3,不是试剂盒,但是师姐用过没问题的) 结果质粒浓度很低。菌液是37度,250rpm摇了11h的,应该够浓。 想问一下有没有什么改进的方法? 另外,关于加过S1、S2和S3之后的操作(剧烈混匀、颠倒……),我查过问过有好多不同的说法。不知道亲们平时怎么做的,哪种效果比较好? 谢谢 qijilaile s1,s2,s3混匀
CRISPR/Cas9 基因敲除实验-- sgRNA 及引物设计
来看一下。提交订单,等待引物到达:华大基因的速度非常快,大约在 2 - 3 个工作日即可拿到,在等待期间需要准备好:LB + 抗生素抗性平板;感受态细胞及相应培养基;无内毒素的 Cas9 载体质粒;BbsI 限制性内切酶;质粒小提试剂盒;常规限制性内切酶。
pl198242:请问各位大侠:用质粒提取试剂盒从大肠杆菌中提取质粒后,想用于细胞转染,还需要另外的操作来除菌么? 另外是否还需要纯化?丁香园网友boboyuan认为:不需要,当然,前提是你提取质粒时操作是规范的。提完的质粒放-4度保存,转染的时候直接用就行了。丁香园网友hzh_0796认为:看你是用什么方法提得,纯度如何我用小提的时候发现,最后一步用洗脱液洗时将吸附柱放进一个新的EP管时盖子居然盖不上,硬着头皮这样拿去离心,自己都不放心用。后面测了下浓度好低,只有89微克每毫升。看来小提
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