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细胞毒性乳酸脱氢酶LDH检测试剂盒

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  • 美国
  • 2025年09月03日
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      WST

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    • 供应商

      上海研卉生物科技有限公司

    • 规格

      100 tests

    细胞毒性乳酸脱氢酶LDH检测试剂盒
    死细胞检测试剂盒

    Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST
    货号: CK12
    细胞毒性LDH检测试剂盒
    概述:
    Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST®是 通过测定细胞释放到培养基中的乳酸脱氢酶(LDH)活性进而测定细胞损害的试剂盒。LDH(乳酸脱氢酶)是存在于细胞质的一种酶,当细胞膜受到损伤 时,LDH 会释放到培养基中。由于释放出的LDH 稳定,检测培养基中LDH 的量可以作为测定死细胞和受损细胞数量的指标。
    本试剂盒可以测定受损细胞所释放出的LDH,其原理是LDH 催化乳酸生成丙酮酸和NADH,NADH 通过电子载体可将水溶性四唑盐WST
    ®(无色)还原成甲臜产物(橙色),WST®甲臜产物的吸光度与LDH 的量呈正比,利用此原理可以测定死细胞和受损细胞的数量。
    本试剂盒中试剂不会和活细胞反应,而且对细胞无损害,可以直接添加到含有细胞的培养基中检测(一步法)。也可以分离细胞后,加到培养基中检测( 低损伤法,分离的细胞可以做其他实验)。本试剂盒采用稳定性高的WST
    ®,配置后的溶液可以长时间保存,不需要现配现用,适用于高通量筛选。
    产品细节图片1
    特点:
    - 双重选择:有2种检测方法(一步法、低损伤法)
    - 操作简单:不需要分离死细胞和活细胞,就可检测死细胞的LDH *一步法
    - 仪器常用:采用常规酶标仪检测
    - 稳定方便:Working Solution可冷藏保存2个月,不需要现配现用
    - 双重验证:配合使用CCK-8可获得死细胞和活细胞的结果
    试剂盒内含:
    - Dye Mixture x 1 - Lysis Buffer 1.1 ml x 1
    - Assay Buffer 11 ml x 1 - Stop Solution 5.5 ml x 1
    储存条件:
    0-5
    所需的设备和材料:
    - CO2 培养箱 - 20, 200 μl 多通道移液器
    - 酶标仪(带有490 nm 滤光片) - 测定用96 孔板 *低损伤法
    - 细胞培养用96 孔板
    *一步法 :贴壁细胞和悬浮细胞都使用平底96 孔板。
    *低损伤法 :贴壁细胞使用平底96 孔板, 悬浮细胞使用圆底或V 底96 孔板。
    注意事项:
    本试剂盒使用玻璃容器及铝盖,建议使用时戴手套。
    测定前的注意事项:
    因为每种细胞的LDH量不同,建议通过预实验确定高对照和低对照的吸光度差异最大的细胞数。
    方法1:一步法
    *用于不需要收集活细胞进行其它实验的LDH检测。
    *如果您需要收集活细胞进行其它实验,请选择方法2:低损伤法。
    一、配制Working Solution
    1)加1 ml Assay Buffer至Dye Mixture中。
    2)完全溶解后转移到Assay Buffer的瓶子中。
    *配好后的Working Solution在避光、0-5 的条件下可以保存2个月。
    *配制的Working Solution可用于检测1块96孔板。
    二、预实验(细胞数的最佳化)
    *因为每种细胞的LDH量不同,为了得到最好的显色效果,推荐做预实验确定最佳细胞量。
    1)用培养基洗涤细胞后,调制成5×105 cells/ml的细胞悬液。
    2)向96孔板中每孔加入100 ul培养基。
    3)如图2所示,向96孔板中A行(高对照和低对照各3个孔)加入100 ul细胞悬液后,
    用多通道移液器按1/2比例用培养基稀释成一个系列细胞梯度。
    另外,准备高对照Blank和背景Blank(只有培养基)各3个孔
    4)在37 CO2培养箱中培养。*培养时间设定跟实际细胞毒性实验的培养时间一致。
    5)在高对照孔中加入10 ul Lysis Buffer。
    6)在37 CO2培养箱中培养30 min。
    7)在每孔中加入100 ul Working Solution。采用包裹铝箔等方法避光,在室温反应30 min。
    8)在每孔中加入50 ul Stop Solution。
    9)用酶标仪测定490 nm的吸光度。
    产品细节图片2
    图2
    三、细胞毒性实验
    1)吸取50 ul用培养基稀释过的细胞悬液至平底96孔板中。
    *用贴壁细胞时,接种细胞至96孔板过夜预培养,换成新的50 ul培养基后,进行操作步骤2)。
    2)加入50 ul含有药物的培养基(表1)。
    3)在37 CO2培养箱内培养合适的时间。
    4)在高对照的孔中加入10 ul Lysis Buffer后,在37 CO2培养箱内培养30 min。
    5)在每个孔中加入100 ul Working Solution后,在避光、室温的条件下培养30 min。
    6)在每个孔中加入50 ul Stop Solution。
    7)用酶标仪测定490 nm的吸光度。
    产品细节图片3
    表1
    方法2:低损伤法
    *用于需要收集活细胞进行其它实验的LDH检测。
    *如果您不需要收集活细胞进行其它实验,请选择方法1:一步法。
    一、配制Working Solution
    1)加1 ml Assay Buffer至Dye Mixture中。
    2)完全溶解后转移到Assay Buffer的瓶子中。
    *配好后的Working Solution在避光、0-5 的条件下可以保存2个月。
    *配制的Working Solution可用于检测1块96孔板。
    二、预实验(细胞数的最佳化)
    *因为每种细胞的LDH量不同,为了得到最好的显色效果,推荐做预实验确定最佳细胞量。
    1)用培养基洗涤细胞后,调制成5×105 cells/ml的细胞悬液。
    2)向96孔板中每孔加入100 ul培养基。
    3)如图3所示,向96孔板中A行(高对照和低对照各3个孔)加入100 ul细胞悬液后,
    用多通道移液器按1/2比例用培养基稀释成一个系列细胞梯度。
    另外,准备高对照Blank和背景Blank(只有培养基)各3个孔。
    4)在每孔中加入100 μl 培养基。
    5)在37 ℃ CO2 培养箱中培养。*培养时间设定跟实际细胞毒性实验培养时间一致。
    6)在高对照孔中加入20 μl Lysis Buffer。
    7)在37 ℃ CO2 培养箱中培养30 min。
    8)96 孔板离心2 min(250×g)。
    9)从每个孔中吸取100 μl 上清液至新的96 孔板中。*为了避免吸出细胞,请小心吸取上清液。
    10)在每孔中加入100 μl Working Solution。采用包裹铝箔等方法避光,在室温反应30 min。
    11)在每孔中加入50 μl Stop Solution。
    12)用酶标仪测定490 nm 的吸光度。
    产品细节图片4
    图3
    三、细胞毒性实验
    1)吸取100 μl 用培养基稀释过的细胞悬液至96 孔板中。
    *用贴壁细胞时,接种细胞至96 孔板过夜预培养,换成新的100 μl 培养基后,进行操作步骤2)。
    2)加入100 μl 含有药物的培养基(表2)。
    3)在37 ℃ CO2培养箱内培养合适的时间。
    4)在高对照孔中加入20 μl Lysis Buffer 后,在37 ℃ CO2培养箱内培养30 min。
    5)96 孔板离心2 min(250×g)。
    6)从每个孔中吸取上清液100 μl 至新的96 孔板中。*为了避免吸出细胞,请小心吸取上清液。
    7)在每个孔中加入100 μl Working Solution 后,在避光、室温的条件下培养30 min。
    8)在每个孔中加入50 μl Stop Solution。
    9)用酶标仪测定490 nm的吸光度。
    产品细节图片5
    表2
    结果的计算
    计算「样品孔 - 样品 Blank孔」「 高对照孔 - 高对照 Blank孔」「 低对照孔 - 背景 Blank孔」的
    吸光度后,算出n=3 的平均值。细胞损伤率根据如下公式算出。
    细胞损伤率(%) = [(A-C)/(B-C)] ×100
    A :样品的吸光度 (样品孔- 样品Blank 孔)
    B :高对照的吸光度 (高对照孔- 高对照Blank 孔)
    C :低对照的吸光度 (低对照孔- 背景Blank 孔)
    产品细节图片6
    细胞毒性实验
    药物:Triton X-100
    细胞:HL60
    培养基:RPMI 1640
    培养条件:37 5 % CO22 h
    检测:490 nm

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