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单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒

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  • ¥2600 - 4980
  • 康朗生物
  • KL-A004
  • 国产/进口
  • 2025年07月12日
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    • 英文名

      单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒

    • 保质期

      -18℃以下,有效期6个月

    • 供应商

      上海康朗生物科技有限公司

    • 保存条件

      -18℃以下,有效期6个月

    • 规格

      48次/盒

    单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒
    本试剂盒适用于增菌培养物、疑似病料及食品中单增李斯特氏菌(Lm)的检测,其检测结果仅供参考。

    本试剂盒用一对单增李斯特氏菌特异性引物,结合一条特异性荧光探针,用一步法荧光PCR技术对单增李斯特氏菌DNA进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染

    者的病原学诊断。本试剂盒中单增李斯特氏菌的探针报告基团为FAM。

    单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒组成:
    组份 数量 规格
    单增李斯特氏菌荧光qPCR反应液(Lm-qPCR MIX) 1

    720μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    阳性对照(Lm-PTC) 1管
     
    50μL/管


    储存条件:-20℃,有效期6个月。

    单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒使用方法:

    一、样品采集:
    ?食品样品:样品的采集与预培养按照《食品安全国家标准食品微生物学检验单核细胞增生李斯特氏菌检验》(GB 4789.30-2010)要求进行。
    ?粪便样品:取粪便置于灭菌的收集管中送检。
    ?病灶部位样品:取发病部位新鲜渗出物、粘液脓血送检。
     注:上述样品建议经过增菌后,收集培养物用于检测。

    二、DNA提取:
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的

    商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    ?液体培养物:取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中,8000rpm离心3min,尽量吸弃上清,加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm

    离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    ?固体培养物:挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    ?粪便样品:挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中,加入0.5mL生理盐水,振荡混匀,13000rpm离心3分钟,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃

    恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
    ?其他液体标本:取标本2-3mL,13000rpm离心3min,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR

    反应。
     注:建议采用相关标准方法进行前增菌,并按照6.2.1方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5μL加入到反应体系中即可。

    由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    三、单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒检测步骤:
    1.试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lm-qPCR MIX),室温融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液
     
    15μL N×15μL

    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品/阴

    性对照(NTC)/阳性对照(Lm-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。 
    2.qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件:
      1循环 50℃ for 2 min
    预变性
     
    1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec

    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM,淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    四、结果分析:
    1.结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    2.试验成立判定
    ?阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。 
    ?阳性对照(Lm-PTC):均产生扩增曲线,且Ct值≤30。
    ?以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    3.结果判定
    ?在试验成立的条件下,Ct值≤30的样本为阳性,表明Lm核酸阳性。
    ?Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明Lm核酸阴性。
    ?如果30<Ct值≤35,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    ?对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行Lm qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,则判为样本阳性,表明Lm核酸阳性;否则判为样本阴性。

    五、注意事项:
    ?初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    ?所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
    ?PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    ?样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    ?试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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