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36
- 英文名:
1g
- 保质期:
详见说明书
- 供应商:
上海抚生
- 保存条件:
低温冷藏
- 规格:
1g
1. 组织和细胞取材速度要快,在获取后应当尽快浸入RNAwait,以防止RNA降解。
2. 冰冻组织不能用RNAwait保存,因为RNAwait不能有效渗入冰冻组织。
3. 保存样品的RNA提取:样本从-20℃或-80℃冰箱取出后,复苏到室温后,取出组织块,再用于提取RNA。细胞样本则复温后低速离心收集细胞,去除RNAwait,再用于提取RNA。后继的处理(如组织匀浆)可以在室温下进行,不必在液氮中操作,RNA仍能有效得到保护。残留少量RNAwait保存液不影响后继提取RNA的质量。
PDTC(NF-κB 抑制剂 / 抗氧化剂 )1g费用详细介绍:

PDTC(NF-κB 抑制剂 / 抗氧化剂 )1g费用实验要点:
1.CTAB 溶液在低于15℃时会析出沉淀,因此在将其加入冷冻的植物材料中之前必须预热。
2.在最适条件下,DNA—CTAB 沉淀呈白色纤维状,很容易一下子就从溶液中钩出。不过,某些植物种的DNA 沉淀中可能含有杂质,特别是多糖,使DNA 沉淀呈絮状或胶状,这种情况下可能需要稍事离心才能得到DNA. —CTAB 沉淀。
3.饱和酚虽然可有效地使蛋白质变性,但酚不能完全抑制RNA 酶的活性,而且酚可以溶解含poLy(A)的mRNA。如果用的混合液,可减轻这两种现象,同时可加入适量的作用是消泡,并使蛋白质层紧密,使水相和有机相分层较好。 细菌的培养和收集 将含有质粒pBS 的DH5α菌种接种在LB 固体培养基(含50μg/ml Amp)中, 37℃培养12-24 小时。用无菌牙签挑取单菌落接种到5ml LB 液体培养基(含50μg/ml Amp)中,37℃振荡培养约12 小时至对数生长后期。小量提取法对于从大量转化子中制备少量部分纯化的质粒DNA 十分有用。这些方法共同特点是简便、快速,能同时处理大量试样,所得DNA 有一定纯度,可满足限制酶切割、电泳分析的需要。
PDTC(NF-κB 抑制剂 / 抗氧化剂 )1g费用操作流程:
1. 根据要保存的各样本的体积,计算出所需RNAwait用量。RNAwait的用量应当是组织体积的10倍(如100mg组织约用1ml RNAwait);离心收集2×106细胞RNAwait的用量是1ml。
2. 将RNAwait按需要量分装入自备保存管中;
3. 快速将较大的组织切成厚度<0.5 cm的任意片状,立即完全浸入RNAwait中。组织的厚度一定要<0.5 cm。组织过厚则RNAwait不能有效渗入,组织中间部位的RNA不能受到保护。较小的组织(如大鼠的肾脏、脾脏,小鼠的大部分器官)取下后可以直接浸入RNAwait。
4. 保存时先将样本浸入RNAwait后置4℃冰箱过夜(4℃过夜是必需的,这样可使RNAwait完全渗入到组织中),然后转移到-20℃冰箱(RNAwait在-20℃时仍为液态,有结晶析出,是正常情况);或者在4℃冰箱过夜后,从RNAwait中取出组织块,转移到-80℃冰箱。在RNAwait中保存的标本,反复冻融至室温20次不影响RNA的质量。
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文献和实验dcz200210021 想向大虾们请教几个问题,现在抑制NF-κB活性的方法有哪些种? 都各有什么优缺点。有没有些关于这方面的文章可以介绍给我看看。不甚感谢! doctormy 常见的方法有: 1、RNAi(NF-κB p65 siRNA):优点特异性较强、缺点价格较高 2、针对NF-kB亚基设计的反义寡核苷酸(如NF-κB p65反义寡核苷酸):优点,靶点明确;缺点,抑制效率不如RNAi 3、转染
licanming 我的GF109203x(Bisindolylmaleimide I,Gö 6850)是sigma的,看说明书上是用DMSO配制母液,但未有说明稀释母液可以用哪些试剂,还是用DMSO吗?我看过一篇文献是用培养基稀释的。请问各位有无经验?一般都是用什么来配的?如果还用DMSO,那会不会DMSO过多,引起细胞损伤? licanming 可以用PBS稀释吗? licanming
,你可以试试,只是稍微比较贵点, myskyld lwjssry wrote: 楼主为什么不做IKK dominant negtive的稳定筛选? 我用的是BAY 11-7082,是IKK抑制剂,效果不错,sigma的,可以试试 Merck 公司提供很多NF-kappa B Activation Inhibitors: 5HPP-33 Acetyl-11-keto-beta-Boswellic
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