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- 2025年07月09日
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50
- 英文名：
1000 只
- 保质期：
详见说明书
- 供应商：
上海抚生
- 保存条件：
低温冷藏
- 规格：
1000 只
1．CTAB 溶液在低于15℃时会析出沉淀，因此在将其加入冷冻的植物材料中之前必须预热。
2．在最适条件下，DNA—CTAB 沉淀呈白色纤维状，很容易一下子就从溶液中钩出。不过，某些植物种的DNA 沉淀中可能含有杂质，特别是多糖，使DNA 沉淀呈絮状或胶状，这种情况下可能需要稍事离心才能得到DNA. —CTAB 沉淀。
3．饱和酚虽然可有效地使蛋白质变性，但酚不能完全抑制RNA 酶的活性,而且酚可以溶解含poLy(A)的mRNA。如果用的混合液，可减轻这两种现象，同时可加入适量的作用是消泡，并使蛋白质层紧密，使水相和有机相分层较好。 细菌的培养和收集 将含有质粒pBS 的DH5α菌种接种在LB 固体培养基(含50μg/ml Amp)中, 37℃培养12-24 小时。用无菌牙签挑取单菌落接种到5ml LB 液体培养基(含50μg/ml Amp)中,37℃振荡培养约12 小时至对数生长后期。小量提取法对于从大量转化子中制备少量部分纯化的质粒DNA 十分有用。这些方法共同特点是简便、快速，能同时处理大量试样,所得DNA 有一定纯度,可满足限制酶切割、电泳分析的需要。
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专用离心管 ( 配研磨杵用 ) 1000 只说明书吐温60 质量规格：>97%,BR Rutin
吐温20 质量规格：≥98%，标准品 Rutin
吐啉(>90%,Ind Grade) 质量规格：≥95%,BR Neosperidin dihydrochalcone
土木香内酯（标准品） 质量规格：HPLC≥98%，标准品 Neosperidin dihydrochalcone
土霉素半钙盐 质量规格：≥98%,BR Oxymatrine
土霉素(进分) 质量规格：HPLC≥98%，标准品 Oxymatrine
土霉素 质量规格：>98%,BR Andrographolide
土拉霉素A，托拉菌素A,泰拉霉素 质量规格：HPLC≥98%，标准品 Andrographolide
土拉霉素A(标准品) 质量规格：HPLC≥97%,BR Apigenin
土荆皮酸(标准品) 质量规格：HPLC≥98%，标准品 Apigenin
专用离心管 ( 配研磨杵用 ) 1000 只说明书操作流程：
1. 根据要保存的各样本的体积，计算出所需RNAwait用量。RNAwait的用量应当是组织体积的10倍（如100mg组织约用1ml RNAwait）；离心收集2×106细胞RNAwait的用量是1ml。
2. 将RNAwait按需要量分装入自备保存管中；
3. 快速将较大的组织切成厚度<0.5 cm的任意片状，立即完全浸入RNAwait中。组织的厚度一定要<0.5 cm。组织过厚则RNAwait不能有效渗入，组织中间部位的RNA不能受到保护。较小的组织（如大鼠的肾脏、脾脏，小鼠的大部分器官）取下后可以直接浸入RNAwait。
4. 保存时先将样本浸入RNAwait后置4℃冰箱过夜（4℃过夜是必需的，这样可使RNAwait完全渗入到组织中），然后转移到-20℃冰箱（RNAwait在-20℃时仍为液态，有结晶析出，是正常情况）；或者在4℃冰箱过夜后，从RNAwait中取出组织块，转移到-80℃冰箱。在RNAwait中保存的标本，反复冻融至室温20次不影响RNA的质量。
专用离心管 ( 配研磨杵用 ) 1000 只说明书注意事项：
1. 组织和细胞取材速度要快，在获取后应当尽快浸入RNAwait，以防止RNA降解。
2. 冰冻组织不能用RNAwait保存，因为RNAwait不能有效渗入冰冻组织。
3. 保存样品的RNA提取：样本从-20℃或-80℃冰箱取出后，复苏到室温后，取出组织块，再用于提取RNA。细胞样本则复温后低速离心收集细胞，去除RNAwait，再用于提取RNA。后继的处理（如组织匀浆）可以在室温下进行，不必在液氮中操作，RNA仍能有效得到保护。残留少量RNAwait保存液不影响后继提取RNA的质量。
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文献和实验millipore超滤离心管想重复使用，请问如何清洗和保存？ 最近使用超滤管，由于管子较贵，想重复用几次，但找不到可靠的资料。不知如何清洗和保存，比如有人说用叠氮化钠，有人说用氢氧化钠，有人说用乙醇浸泡。莫衷一是。很急用。 【回答精要】 使用后用0.1M NaOH泡24h，然后20%乙醇浸泡保存。 这个我是听老板们说的，的确乙醇泡完后孔径会增大，基本就是5-10KD最大，也就是说如果你的蛋白在21KD以上，应该没问题。或者可以不用乙醇泡，用NaOH洗之后
问：终止消化过滤后离心，3000转/分 15分钟，离心管碎了，为什么呢？跟离心速度有关么?请大家帮忙分析。答；如果没有猜错的话，你使用的是垂直离心机，我认为这个和角速度及离心力没有太大的关系，可能是你一次离好几管时，放置在一个大离心杯里的2－3个离心管因离心力相互挤压造成的，或者是大离心杯里的橡胶垫老化变硬，离心时也会挤压离心管。建议离心时，800－1000rpm，5min就可以离下细胞；或者往大离心杯里插离心管时不要太使劲，轻轻放进去就可以了。答：我们实验室是这样的情况：离心时设定
【求助】millipore超滤离心管想重复使用，请问如何清洗和保存？ 最近使用超滤管，由于管子较贵，想重复用几次，但找不到可靠的资料。不知如何清洗和保存，比如有人说用叠氮化钠，有人说用氢氧化钠，有人说用乙醇浸泡。莫衷一是。很急用。 【回答精要】 使用后用0.1M NaOH泡24h，然后20%乙醇浸泡保存。 这个我是听老板们说的，的确乙醇泡完后孔径会增大，基本就是5-10KD最大，也就是说如果你的蛋白在21KD以上，应该没问题。或者可以不用乙醇泡，用NaOH洗之后
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