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- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
4℃
- 库存:
大量
- 供应商:
上海机纯实业有限公司
- 规格:
5ml
DNA凝胶加样缓冲液(10×DNA loading buffer)是一种经过适当改良的10倍浓缩的DNA上样缓冲液。本上样缓冲液以溴酚蓝为指示剂,稀释至1×后比重仍然较大,加样后易下沉,且颜色清晰可见,起到电泳指示的作用。
操作步骤(仅供参考):
按照每9μl DNA样品加入1μl DNA Loading Buffer的比例,混合DNA样品和DNA Loading Buffer(10×)。
直接加到DNA胶内,电泳。
注意事项:
如果每次的使用量很小,可以适当分装后再使用。
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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文献和实验水溶液 ⅳ 0.25%溴酚蓝 4℃ 40%(w/v)蔗糖水溶液 碱性加样缓冲液: 300mmol/l
1g溴化乙锭,转移到广口瓶中,加100ml水,用磁力搅拌器搅拌直到完全溶解。用铝箔包裹装液管,于4℃贮存。 凝胶上样液(gel loading solutions) 6×碱性凝胶上样液(室温贮存) 成分及终浓度 配制10ml溶液各成分用量 0.3 N 氢氧化钠 6 mmol/L EDTA 18%聚蔗糖(400型) 0.15%溴甲酚绿 0.25%二甲苯青FF 水 300ul 10N 氢氧化钠 120ul 0.5mol/L EDTA(pH8.0)
【求助】提质粒后,跑电泳,用10乘Loading Buffer 还是6乘Loading Buffer?
ilovelc999 请问各位,提质粒后,用20微升TE溶解,然后进行电泳,应该用10乘Loading Buffer 还是用6乘Loading Buffer?另外Buffer与质粒溶液一般应以什么比例混合好呢?多谢各位啦! 纯属菜鸟 10乘 5:1的比例 质粒5 肥宝 我是用6X的,1:5,质粒5,不过也没那么严格,一般也就点个小点估计1ul lihuijin017
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