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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
冷藏
- 保质期:
长期
- 库存:
703
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 规格:
500ml
产品特点:
1、快速和环保:快速转膜液不使用甲醇,减轻了对实验者和环境的伤害。
2、兼容性好:快速转膜液能兼容Laemmli胶,预制胶,Bis-Tris胶等多种凝胶。
3、转移效率高:快速转膜液对分子量跨度较大的蛋白也有很好的转移效率,有效解决了大小蛋白不能在同一张膜上同时转移的问题。
使用方法:
转膜前的准备:
5-6张裁好的滤纸;裁好的转印膜;足够的1×快速转移buffer
一、湿转法(Tank blot):
1、按照下表配制1×快速转膜液
| 1×快速转膜液配制量 | |||
| 100ml | 500ml | 1000ml | |
| 10×快速转膜液 | 10ml | 50ml | 100ml |
| 无水乙醇 | 20ml | 100ml | 200ml |
| 超纯水 | 70ml | 350ml | 700ml |
2、将滤纸和海绵浸泡在1×快速转膜液中,完全浸湿。
3、将凝胶在超纯水中浸泡漂洗2分钟,去除胶表面的SDS;随后将凝胶浸泡在1×快速转膜液中。
注意:水中漂洗时间一定不能超过2分钟,否则分子量较大的蛋白不能完全转移。
4、按照以下顺序做好转印三明治结构:
—>负极(阴极)
—>一块海绵
—>2mm滤纸
—>凝胶
—>转印膜
—>1mm滤纸
—>一块海绵(根据三明治的厚度选择是否使用)
—>正极(阳极)
注意:
a.要彻底清除三明治结构中的气泡,适当补加1×快速转膜液保持三明治结构湿润。
b.PVDF膜使用前要用无水甲醇润湿30秒。
c.三明治结构的制作不能太紧,也不能太松。太紧和太松都会影响转印效果。如果太紧的话,可以去除阳极一侧的海绵或滤纸。
5、将三明治结构放于转移槽中。
注:转移槽中可以不用1×快速转膜液,可以用1×TGS(Tris-Glycine-SDS)电泳缓冲液取代。三明治结构中的快速转膜液足够保证转膜的完成。
二、半干转(Semi-dry blot):
1、按照下表配制1×快速转膜液:
| 1×快速转膜液配制量 | |||
| 100ml | 500ml | 1000ml | |
| 10×快速转膜液 | 10ml | 50ml | 100ml |
| 无水乙醇 | 20ml | 100ml | 200ml |
| 超纯水 | 70ml | 350ml | 700ml |
2、将滤纸浸泡在1×快速转膜液中,完全浸湿。
3、将凝胶在超纯水中浸泡漂洗2分钟,去除胶表面的SDS;随后将凝胶浸泡在1×快速转膜液中。
注意:水中漂洗时间一定不能超过2分钟,否则分子量较大的蛋白不能完全转移。
4、按照以下顺序做好转印三明治结构:
—>负极(阴极)
—>下层滤纸
—>凝胶
—>转印膜
—>上层滤纸
—>正极(阳极)
半干转时,滤纸、胶、膜之间的大小,一般是下层滤纸>=膜>=胶>=上层滤纸。上下两层的滤纸一定不能接触;滤纸、胶、膜之间千万不能有气泡。接触的滤纸和气泡会造成短路。
注意:PVDF膜使用前要用无水甲醇润湿30秒。
三、转移条件:
推荐使用恒流转移
| 电流 | 转移时间 |
| 300 mA | 30~35min |
| 330 mA | 25~30min |
| 350 mA | 25~30min |
| 375 mA | 20~25min |
| 400 mA | 15~20min |
储存条件:18~25℃,有效期1年。
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文献和实验1. 准备:分别准备泡膜和转膜用的试剂和用具,在电泳槽中倒好转膜液 2.揭胶:电泳结束后,将电泳槽移至水池中,倒掉电泳液,将内槽提起放在水池边,取出两边玻璃板。用纯水冲干净玻璃板,小心揭开短板,去掉集成胶,小心将胶转入转膜液在中。 3.转膜:将夹子打开,黑色在底,依次放置海绵、滤纸、胶、膜、滤纸、海绵,关好夹子(均在液面下进行,注意气泡)快速放入架子中。在电泳槽中放冰袋。 4.电泳。 封闭及孵抗体: 1. 转膜等待时 准备封闭液(即Non-fat milk 5% in TBST
,因此务必使用中心区域的孔,并避免使用边缘附近的孔影响稳定性。比如说,使用的是 96 孔板(12×8 孔),就只使用中心的 60 孔(10×6 孔)进行实验。 图 1.载物台上式培养箱 2.通过创造稳定的环境温度改善聚焦效果 需要考虑的因素是室内温度,细微的温度变化也会影响到成像性能。 显微镜的环境温度稳定性对于活细胞的高倍率观察尤其重要。由于高数值孔径观察的景深较浅,因此即使温度变化造成很小的Z漂移,系统也可能会因此离焦。 为了优化环境条件,开始实验之前请确保打开空调并保持室温稳定。另外为了提高
Buffer Salt Tween20 ,1L) 10×TBS 100ml Tween 1ml 蒸馏水定容1L 4、10×转膜液(1L) Tris碱 30.3g Gly (甘氨酸) 150.1g 加水定容至1L 用时取100 mL ,加甲醇200 mL ,在定容1L 即为1 × 5、4×Loading buffer 0.5M Tris-HCl (pH 6.8) 2.5ml
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