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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
220
- 英文名:
Inclusion body protein lysate
- 保质期:
长期
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
冷藏
- 规格:
100ml
特别提示:包括包涵体蛋白溶解液在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:包涵体蛋白溶解液
英文名称:Inclusion body protein lysate
产品货号:SNM385
产品规格:100ml
除了包涵体蛋白溶解液,,我公司还供应以下相关产品:
名称:一站式SDS-PAGE蛋白电泳套装
货号:BTN80810
规格:30次
SDS-聚*烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)是目前电泳法变性分离蛋白质的主要方法,但是单独配制各种溶液十分繁琐,为此我们公司开发了本产品。
产品特点:
1.一站式,即开即用,用户不需单独准备各种成分,十分方便。
2.安全,将实验人员接触粉末状*烯酰胺的可能降到最低。
3.灵活,分开提供的*烯酰胺和甲叉双*烯酰胺便于配制各种比例和浓度的SDS-PAGE,满足分离各种大小不同的蛋白质的要求。
4.使用改良的浓缩胶缓冲液,由于其含有染料,制备的浓缩胶呈蓝色,便于上样时识别加样孔。
5.电泳后可直接用于考染、银染、Western杂交等实验。
产品组成:
| 成分 | 规格 |
| *烯酰胺干粉 | 60g |
| 甲叉双*烯酰胺干粉 | 3g |
| 分离胶缓冲液,4× | 200ml |
| 浓缩胶缓冲液,4×(含染料) | 100ml |
| TEMED | 1.5ml |
| *硫酸铵(干粉) | 1g |
| SDS-PAGE上样液,5× | 1套(1mL) |
| SDS-PAGE电泳液,1×(干粉) | 1套(20L) |
| 说明书 | 1份 |
储存条件:常温运输和保存,但TEMED和5×SDS-PAGE上样液需低温运输,分别在4℃和-20℃有效期一年。
自备试剂:去离子水。
使用方法:
1.第一次使用本产品时需先配制30%*烯酰胺溶液:在本产品提供的装有60克*烯酰胺干粉的塑料瓶中加入146mL自备的去离子水,充分摇晃直到溶解即得200mL 30%*烯酰胺溶液(用手大约摇10-20分钟)。
2.第一次使用本产品时还需配制30%*烯酰胺-甲叉双*烯酰胺(19:1)溶液(30% AB溶液,下同): 不同实验需要加入不同比例的甲叉双*烯酰胺。对SDS-PAGE电泳,*烯酰胺与甲叉双*烯酰胺比例一般在19:1左右,因为此时PAGE胶的孔径最小,分辨率最高。制备方法是将3g甲叉双*烯酰胺干粉加入到200mL上步配好的30%*烯酰胺溶液中(注意:甲叉双*烯酰胺干粉有神经毒性,避免吸入粉末)。配好的30%AB溶液最好4℃避光保存并在1月内用完。
3.根据平板的面积和胶的厚度估计需要配制的浓缩胶和分离胶的体积。并根据要分离的蛋白质的大小确定选择浓缩胶和分离胶的浓度,参考下表:
| 蛋白质大小范围(kD) | 最佳浓缩胶浓度 | 最佳分离胶浓度 |
| 15-45 | 4% | 15% |
| 15-60 | 4% | 12.5% |
| 18-75 | 4% | 10% |
| 30-120 | 4% | 7.5% |
| 60-200 | 不需要 | 5% |
注:如果上样体积少于10μL,可以不需要浓缩胶。
4.配制10%的APS(*硫酸铵):称0.1克过APS干粉到1mL去离子水中,摇晃溶解。配制好的10%的APS溶液可以在4℃存放一周。
5.配制分离胶:在一个25mL的三角瓶中,先按下表的用量加入水、30%AB溶液和4×分离胶缓冲液。以下是配制10mL胶的用量,更大体积则各成分用量需按比例增加。*烯酰胺溶液有神经毒性,一定要戴手套操作。
| 胶浓度 | 用量(单位:mL) | ||
| 水 | 30%AB溶液 | 4×分离胶配胶液 | |
| 5% | 5.83 | 1.67 | 2.50 |
| 6% | 5.50 | 2.00 | 2.50 |
| 7% | 5.17 | 2.33 | 2.50 |
| 7.5% | 5.00 | 2.50 | 2.50 |
| 8% | 4.83 | 2.67 | 2.50 |
| 9% | 4.50 | 3.00 | 2.50 |
| 10% | 4.17 | 3.33 | 2.50 |
| 11% | 3.83 | 3.67 | 2.50 |
| 12% | 3.50 | 4.00 | 2.50 |
| 13% | 3.17 | 4.33 | 2.50 |
| 14% | 2.83 | 4.67 | 2.50 |
| 15% | 2.50 | 5.00 | 2.50 |
| 16% | 2.17 | 5.33 | 2.50 |
6.配制浓缩胶(一般使用4%的浓度):在一个25mL的三角瓶中,先按下表的用量加入水、30%A B溶液和4×浓缩胶缓冲液。以下是配制10mL 4%浓缩胶的用量,*烯酰胺溶液具有神经毒性,一定要戴手套操作。
| 胶浓度 | 用量(mL) | ||
| 水 | 30%AB溶液 | 4×浓缩胶缓冲液(含蓝色染料) | |
| 4% | 6.17 | 1.33 | 2.50 |
7.将分离胶和浓缩胶溶液摇晃混匀,抽真空10-15分钟以去除溶液中的氧气(氧气能抑制*烯酰胺聚合反应,不去除将影响*烯酰胺聚合反应)。
8.分别加入50μL 10%APS和30-50μL TEMED(这是配制10mL分离胶和浓缩胶的用量,更大体积的胶则用量需按比例增加),迅速摇匀。
9.先灌分离胶,在胶的液面距离顶部1.5 cm的时候,停止灌胶。
10.由于分离胶比重较大,可以立即在上面灌浓缩胶,但灌注时必须小心,不要破坏分离胶和浓缩胶的液面,在浓缩胶液面达到顶部时停止灌胶,插入梳子,室温聚合30-60分钟。如果不能做到小心灌浓缩胶,则必须待分离胶室温聚合30-60分钟后再灌制。
11.拔出梳子,用1×SDS-PAGE电泳液冲洗加样孔。
12.将凝胶板固定在电泳装置上,往上槽和下槽加入足够的1×SDS-PAGE电泳液。本产品提供20升的SDS-PAGE电泳液干粉,将所有干粉溶解在2 L水中即得10×SDS-PAGE电泳液,用时再稀释成1×工作液。
13.在蛋白质样品中加入5×SDS-PAGE上样液(4μL样品中加1μL上样液),100℃煮沸3~5分钟。短暂离心,取上清上样。
14.先用10 mA的电流电泳(对0.75mm厚×14cm×14cm的胶)直到染料进入从浓缩胶进入分离胶。
15.将电流增加到15 mA,直到染料进入分离胶底部时终止电泳,取出凝胶进行后续的实验处理。
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文献和实验zhubest 我正在克隆一个八百多bp的基因,换了很多载体,表达条件换了不少,可始终不能得到可溶的蛋白表达,哪位大师能够支招,可以提供一些表达条件,谢谢了 freecell 可以尝试真核表达系统,例如杆状病毒系统或者毕赤酵母。 vbvbvbfgiw 先得确定连接转化都成功了吧,换一种裂解细胞的方法试试(溶剂),使你的蛋白溶解。 版主freecell留言:
条带说明,从左到右,或1234567..... 2、建议把流程中的各个部分所用缓冲液说明一下,例如: 破菌缓冲液:如pH8.0,20mMTris,0.5N NaCl 破菌方法:如超声,4s工作,4s间隙,冰水浴,共200次 包涵体洗涤液:如PBS(pH7.4,20mM PB,0.15N NaCl) 包涵体溶解液:如pH8.0,20mMTris,0.5N NaCl,8M尿素 柱平衡液:如pH8.0,20mMTris,0.5N NaCl,8M尿素,20mM 咪唑 柱淋洗液:如pH
标签蛋白 StrepⅡ-六组氨酸-蛋白 02双标签蛋白可促进目的蛋白增溶性和特异性双重提高 当组氨酸标签蛋白表达量低,或纯化过程中蛋白不稳定时,可能是由于目的蛋白疏水性强导致溶解性不高、或未能正确折叠形成包涵体影响纯化效果。大分子增溶性蛋白标签,如 GST、MBP 标签可改善这一问题。但一步亲和难以满足高纯度蛋白的要求。大分子标签与小分子标签组合的双标签蛋白不仅可以提高目的蛋白溶解性和稳定性,还可以提高目的蛋白的特异性。 下图展示的是双标签绿色荧光蛋白(六组氨酸-绿色
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