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- Mirus
- MIR 2225
- 2025年09月17日
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MIR 2225
- 英文名：
TransIT®-mRNA Transfection Kit
- 供应商：
TransIT®-mRNA Transfection Kit
- 规格：
0.4ml
mRNA转染试剂盒，包含mRNA转染试剂和转染增强辅助试剂
TransIT®-mRNA Transfection Kit TransIT®-mRNA转染试剂盒（包含mRNA转染试剂和转染增强辅助试剂，可满足大分子量RNA的高效转染，适用于病毒包装、蛋白表达和CRISPR基因编辑等） （MIR2225 ）
0.4ml
每个试剂盒都配有TransIT®-mRNA转染试剂和mRNA增强试剂
低细胞毒性——保持细胞密度，减少实验偏差
高效传递——在大量细胞中实现RNA传递，确保实验成功
血清相容性–在有血清的情况下进行转染，无需更换培养基并保持细胞健康
提供各种大小的RNA——非常适合于特殊应用，如病毒生产、蛋白质表达和CRISPR基因组编辑
多种树突状细胞通过TransIT®-mRNA转染试剂盒转染的mRNA表达GFP。小鼠原代骨髓源性树突状细胞（BMDC）和小鼠树突状细胞类型（JAWSII和DC 2.4）使用TransIT®-mRNA试剂：Boost:mRNA比率为1:1:1（µl:µl:µg）转染1µg编码GFP的封端和多聚腺苷裂解mRNA。初级BMDC、JAWSII和DC 2.4在24孔培养皿中接种（80000个细胞/孔）。转染8小时后，通过流式细胞仪检测细胞。误差条代表至少3个独立实验的标准偏差。
数据由杜克大学Kyle Phua（首席研究员：梁锦华）提供
TransIT®-mRNA转染试剂盒有效地将lacZ mRNA输送至CHO-K1细胞。使用TransIT®-mRNA转染试剂盒，模拟转染CHO-K1细胞（A）或用封端的聚腺苷酸化lacZ编码mRNA（B）转染CHO-K1细胞。转染后约18小时，使用Mirus Bio的β-半乳糖染色试剂盒对细胞进行染色，以识别lacZ转染的细胞。
TransIT®-mRNA Transfection Kit TransIT®-mRNA转染试剂盒（包含mRNA转染试剂和转染增强辅助试剂，可满足大分子量RNA的高效转染，适用于病毒包装、蛋白表达和CRISPR基因编辑等） （MIR2225 ）
0.4ml
每个试剂盒都配有TransIT®-mRNA转染试剂和mRNA增强试剂
低细胞毒性——保持细胞密度，减少实验偏差
高效传递——在大量细胞中实现RNA传递，确保实验成功
血清相容性–在有血清的情况下进行转染，无需更换培养基并保持细胞健康
提供各种大小的RNA——非常适合于特殊应用，如病毒生产、蛋白质表达和CRISPR基因组编辑
PLAY
TransIT®-mRNA (1:1:1)
RNAiMAX (4:1)
Stemfect™ (2:1)
使用Cas9 mRNA+引导RNA寡核苷酸进行高效基因组编辑。HEK293T/17、U2OS和NHDF细胞与0.5µg编码mRNA的Cas9、5meC、ψ（Trilink Biotechnologies）和25nM靶向2部分gRNA的PPIB（Dharmacon）共转染，使用TransIT®-mRNA转染试剂盒（0.5µl/孔的24孔板，mRNA试剂和Boost，Mirus Bio）。T7E1错配检测用于测量转染后48小时的切割效率。
在使用TransIT®-mRNA转染试剂盒连续14次转染后进行高效低毒转染。使用TransIT®-mRNA转染试剂盒、Lipofectamine®RNAiMAX（Life Technologies）和Stemfect在相同的BJ成纤维细胞群中重复每日转染™ RNA转染试剂盒（Stemgent）——含有含有假尿苷和5mC修饰碱基的封端多聚腺苷化EGFP mRNA（Trilink Biotechnologies，Inc.）。测试了多种试剂与RNA的比率，并给出了最佳比率。在12孔板中使用指示的试剂与RNA的比率进行转染，以输送1µg RNA。转染后每天在同一视野内拍摄GFP和相衬图像。通过流式细胞术在番石榴easyCyte上测量转染效率™ 每天连续14次转染后5HT（蓝色条）。使用流式细胞术（黑线灰色条）中测量的细胞计数测定细胞活力。误差条代表三口井的标准偏差。
TransIT®-mRNA转染试剂盒将GFP mRNA转染到DC 2.4树突状细胞中。使用TransIT®-mRNA转染试剂盒，用（A）0.5µg，（B）1µg和（C）2.5µg经1µl TransIT®-mRNA试剂盒和1µl Boost转染DC 2.4细胞，并用1µl TransIT®-mRNA试剂盒和2.5µg经封端和聚腺苷酸化的编码GFP的mRNA。细胞在24孔培养皿中以100000个细胞/孔接种过夜。转染10小时后拍摄图像。
数据由杜克大学Kyle Phua（首席研究员：梁锦华）提供
使用Cas9 mRNA+引导RNA寡核苷酸进行高效基因组编辑。HEK293T/17、U2OS和NHDF细胞与0.5µg编码mRNA的Cas9、5meC、ψ（Trilink Biotechnologies）和25nM靶向2部分gRNA的PPIB（Dharmacon）共转染，使用TransIT®-mRNA转染试剂盒（0.5µl/孔的24孔板，mRNA试剂和Boost，Mirus Bio）。T7E1错配检测用于测量转染后48小时的切割效率。
在使用TransIT®-mRNA转染试剂盒连续14次转染后进行高效低毒转染。使用TransIT®-mRNA转染试剂盒、Lipofectamine®RNAiMAX（Life Technologies）和Stemfect在相同的BJ成纤维细胞群中重复每日转染™ RNA转染试剂盒（Stemgent）——含有含有假尿苷和5mC修饰碱基的封端多聚腺苷化EGFP mRNA（Trilink Biotechnologies，Inc.）。测试了多种试剂与RNA的比率，并给出了最佳比率。在12孔板中使用指示的试剂与RNA的比率进行转染，以输送1µg RNA。转染后每天在同一视野内拍摄GFP和相衬图像。通过流式细胞术在番石榴easyCyte上测量转染效率™ 每天连续14次转染后5HT（蓝色条）。使用流式细胞术（黑线灰色条）中测量的细胞计数测定细胞活力。误差条代表三口井的标准偏差。
TransIT®-mRNA转染试剂盒将GFP mRNA转染到DC 2.4树突状细胞中。使用TransIT®-mRNA转染试剂盒，用（A）0.5µg，（B）1µg和（C）2.5µg经1µl TransIT®-mRNA试剂盒和1µl Boost转染DC 2.4细胞，并用1µl TransIT®-mRNA试剂盒和2.5µg经封端和聚腺苷酸化的编码GFP的mRNA。细胞在24孔培养皿中以100000个细胞/孔接种过夜。转染10小时后拍摄图像。
数据由杜克大学Kyle Phua（首席研究员：梁锦华）提供
数据由杜克大学Kyle Phua（首席研究员：梁锦华）提供
TransIT®-mRNA转染试剂盒有效地将lacZ mRNA输送至CHO-K1细胞。使用TransIT®-mRNA转染试剂盒，模拟转染CHO-K1细胞（A）或用封端的聚腺苷酸化lacZ编码mRNA（B）转染CHO-K1细胞。转染后约18小时，使用Mirus Bio的β-半乳糖染色试剂盒对细胞进行染色，以识别lacZ转染的细胞。
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