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- 2025年07月10日
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江西江蓝纯生物试剂有限公司
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RT
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30T
产品简介：
聚胺凝胶电泳(Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis，SDS-PAGE)原理在于聚酰胺凝胶为网状结构，具有分子筛效应。它有两种形式：非变性酰胺凝胶及SDS-酰胺凝胶；非变性酰胺凝胶，在电泳的过程中，蛋白质能够保持完整状态，并依据蛋白质的分子量大小、蛋白质的形状及其所附带的电荷量而逐渐呈梯度分开，主要用于分离蛋白质和寡核苷酸。常规SDS-PAGE 凝胶电泳适用于分离大分子蛋白，对于小分子量的蛋白或多肽，分辨率大大降低。
Leagene Tricine-SDS-PAGE 电泳能够较的分离10KD 以下的蛋白或多肽，是电泳法分离多肽的主要方法，30T一般可以配制30～35 块胶，具体配制的量应根据器具大小决定。电泳分离后可直接考马斯亮蓝染色、银染等。
操作步骤(仅供参考)：
1、 配制10(APS)：直接在0.3g Ammonium Persulfate 中加入3ml 蒸馏水，充分溶解，分装成小份储存于-20℃或4℃。
2、 根据目的蛋白分子量大小选择合适的凝胶浓度，按照附表配制分离胶：
①将不同体积的蒸馏水、49.5%T 6%C、Gel buffer、Glycerol 加入到离心管中充分混合。
②加入10%APS 和TEMED，立即涡旋混匀5～10s，以使溶液充分混匀。
③在凝胶模具中迅速灌入适量分离胶溶液(1mm mini-gel，分离胶溶液加约4ml），然后在分离胶溶液上轻轻覆盖一层1～3cm 的水层，使凝胶表面保持平整。
④静置，待分离胶和水层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。
3、 根据目的蛋白分子量大小选择合适的凝胶浓度，按照附表配制夹层胶：
①去除覆盖在分离胶上的水层，用滤纸将残留的水尽量吸去。
②将不同体积的蒸馏水、49.5%T 3%C 和Gel buffer 加入到离心管中混合。
③加入10%APS 和TEMED，立即涡旋混匀5～10s，以使溶液充分混匀。
④将适量的夹层胶溶液迅速加至分离胶的上面(对于1mm 的mini-gel，夹层胶溶液加约1ml)，然后在夹层胶溶液上轻轻覆盖一层1～2cm 的水层，使凝胶表面保持平整。
⑤静置，待夹层胶和水层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。
4、 根据目的蛋白分子量大小选择合适的凝胶浓度，按照附表配制浓缩胶：
①去除覆盖在夹层胶上的水层，用滤纸将残留的水吸去。
②将不同体积的双蒸水、49.5%T 3%C 和Gel buffer 加入到离心管中混合。
③加入10%APS 和TEMED，立即涡旋混匀5～10s，以使溶液充分混匀。
④将梳子插入凝胶内，避免产生气泡。
⑤静置，待凝胶聚合后，小心地拔出梳子，避免破坏加样孔。进行电泳操作。
5、 电泳
将电泳槽置于4℃或冰水浴中，外槽加入阳极缓冲液，内槽加入阴极缓冲液，30V 预电泳10 min，将处理的样品加入点样孔，30V 电泳1h，100V 电泳至溴酚蓝到达胶底部后停止电泳，进行后续的考马斯亮蓝染色或电转。
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文献和实验. Cathode buffer (0.1 M Tris, 0.1 M tricine, 0.1% SDS, pH 8.25) Dissolve 6.055 g Tris base and 8.96 g tricine in a total volume of 500 ml dH2O. Filter the solution through a 0.45 µm filter, add 0.5 g electrophoresis-grade SDS
Tricine胶比较容易将样品压平，具体原因我也没有搞清楚，但可以肯定的是这种胶跑出来的Marker又细又直，同样，显出来的条带也压的很好。与普通的SDS-PAGE胶跑出来的结果相比，Marker扩散没有那么厉害，各泳道条带间隔明显，不像普通胶的条带容易连到一起。反正跑出来的条带就是很漂亮。 Tricine-SDS-PAGE胶的配方：（我一直用的就是10%这个浓度，把8KD
【原创】Tricine SDS-PAGE凝胶配方（16.5％）
这篇配方是我原发在这儿的怕帖子沉了，搜索了一下就开了一个新主题。另有Tricine SDS-PAGE凝胶配方（10％）的配方，有战友需要话我再发出来 。希望用了这个配方的战友如果效果好的话请跟贴说明，效果不好的话，我尽可能帮助战友们分析一下问题，反正这是我实践过的东西，不应该跑步出来的呀^_^另外Tricine SDS-PAGE16.5％是我见过最浓的Tricine SDS-PAGE的胶了，真没听说过20％Tricine SDS-PAGE胶，如果谁有说一下效果怎么样，是否能分离到几百，甚至几十
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