一次性易翻盖离心管

PCR实验操作程序

污染，导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决：①操作时应小心轻柔，防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。②除酶及不能耐高温的物质外，所有试剂或器材均应高压消毒。所用离心管及样进枪头等均应一次性使用。③必要时，在加标本前，反应管和试剂用紫外线照射，以破坏存在的核酸。二是空气中的小片段核酸污染，这些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。可互相拼接，与引物互补后，可扩增出PCR产物，而导致假阳性的产生，可用巢式PCR方法来减轻或消除。 3. 出现非特异性扩增带 PCR扩增后出现的条带与预计的大小

移液工具如何选择？

a.根据需要处理样本容量的大小选择合适的量程，移液器最大量程的30%—100 % 是较佳的使用范；不要用小量程的移液器移取大体积的液体，以免影响准确度；同时，如果需要移取量程范围以外较大量的液体, 例如大于10ML以上的液体，建议使用瓶口分液器或大容量移液器工具, 如DispensMate瓶口分液器Levo Plus/Levo Me电动大容量。   b.根据样本的性质选择不同的移液工具，空气体活塞式移液器适用常规水性溶液； 而外置活塞式移液器适用于高蒸气压、高粘度、易挥发、易气泡的液体。  

缓冲液配制指南

过硫酸胺 0.1 g ，加超纯水1.0 mL 溶解后，4 ℃ 保存，保存时间为 1 周。（-20 ℃长期保存） 30% 丙烯酰胺 溶于总体积为 50 mL 的水中，定容至 100 mL。室温保存于棕色瓶。 10× PBS（2L） NaOH 调 pH 值至 7.4，定容至 2 L。保存于室温。 还原型 5×SDS 上样缓冲液 混匀后，分装于 1.5 mL 离心管中，4 ℃ 可保存数周，-20 ℃ 可长期保存。 电泳液缓冲液 加蒸馏水溶解定容至 1000 mL 室温保存，1 次溶液可重复