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双特异性蛋白磷酸酶10抗体

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  • 上海莼试
  • 进口/国产
  • 2025年07月13日
  • WB IHC-P IHC-F IF
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      上海莼试

    • 库存

      15

    • 靶点

      DUSP10

    • 克隆性

      多克隆

    • 保质期

      详见说明书

    • 抗体英文名

      Anti-DUSP10

    • 抗体名

      双特异性蛋白磷酸酶10抗体

    • 标记物

      HRP等

    • 宿主

      鼠,牛,马,兔,羊等

    • 适应物种

      Human, Mouse, Rat等

    • 亚型

      IgG

    • 形态

      液体或固体

    • 应用范围

      WB IHC-P IHC-F IF

    • 浓度

      10mg/ml

    • 保存条件

      密封保存

    • 规格

      100ul

    产品名称:双特异性蛋白磷酸酶10抗体
    英文名称:Anti-DUSP10
    库存地:上海库
    货期:现货
    价格:以咨询为准!
    用途:仅供高校实验室以及科研单位使用

    公司优势:
    1.拥有一批专业高效的团队,专门解决客户在实验过程中遇到的各种难题;
    2.多年的应用经验积累;
    3. 双特异性蛋白磷酸酶10抗体规格牌号齐全,满足不同客户的使用需求;
    4.库存充足,供货周期短,能解决客户的急需问题;
    5.我们秉承诚信至上、务实做事的信条,是客户值得信赖的合作伙伴。

    免疫组化结果分析:
    1、首先要确定免疫组化技术是否合格,合格的染色结果应该是背景颜色浅淡或无着色,而阳性标志物清晰和定位明确。
      切片中的正常组织可以作为最简便的对照来判断染色结果的可靠与否,例如用Vimentin抗体,间质成纤维细胞利血管壁平滑肌细胞胞浆应呈阳性。肯定为阳性的对照组织却呈阴性,待测组织的染色结果也就不可靠;这现象常是由于抗体失效或过度稀释、组织中抗原严重丢失等。
    2、不仅要判断所检组织中有或无阳性标记物,还要注意阳性信号的分布部位和形态特征。
    一般说来,阳性信号应与被测抗原所在的部位一致,大部分细胞抗原位于胞质内,其中亦有区别,有的阳性颗粒弥散于整个细胞的胞质,有的则呈斑块状局限于胞浆某处。还有些抗原同时分布于胞质和胞膜(如胃肠腺癌细胞的EMA),或核与胞质(S-100HMB-45)。同一种抗原在不同类型的细胞可定位不同,因而分布的特点也有一定的鉴别意义。

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    [Val671]-Amyloid b//A4 Protein Precursor770 (667-676)  Ser-Glu-Val-Lys-Val-Asp-Ala-Glu-Phe-Arg
    [β-Ala70]-C3a (70-77)  β-Ala-Ser-His-Leu-Gly-Leu-Ala-Arg
    [β-Ala8]-Neurokinin A (4-10)  Asp-Ser-Phe-Val-β-Ala-
     

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      ,NCBI 在前面:NCBI_PTEN这边主要表明 PTEN 是一个带有类张力蛋白结构域的双特异性蛋白酪氨酸酶。和其他磷酸酶不一样(其他磷酸酶磷酸化蛋白后呈现激活状态),PTEN 磷酸酶催化底物磷酸化,从而负性调控细胞内脂酰肌醇- 3、4、5 -三磷酸腺苷(听着像一个信号传导用的什子),并且负性调控 AKT/PKB 信号通路,从而起到肿瘤抑制因子的作用。其次,由非典型 (CUG) 上游起始位点的使用产生一个较长的同工异构体(PTEN-long 或者 PTENα),该异构体通过亮氨酸启动翻译

    • 蛋白质印迹分析(Western Blot Analysis)

      分离;通过电流将凝胶中的蛋白质转移到聚偏二氟乙烯膜上;利用抗体(一抗)与抗原发生特异性结合的原理,以抗体作为探针钓取目的蛋白。值得注意的是在加入一抗前应首先加入非特异性蛋白,如牛血清白蛋白对膜进行“封阻”而防止抗体与膜的非特异性结合。 经电泳分离后的蛋白往往需再利用电泳方法将蛋白质转移到固相载体上,我们把这个过程称为电泳印迹。常用的两种电转移方法分别为: 1.半干法: 凝胶和固相载体被夹在用缓冲溶液浸湿的滤纸之间,通电时间为10分钟~30分钟。 2.湿法:凝胶和固相载体夹心浸放在转移

    • 在混悬液中结合:抗体-微珠匀浆法

      蛋白质,尽管这些反应一般要比抗体-抗原间的反应弱,但在待纯化的抗原制品中有过量的非特异性蛋白就将影响纯化效果。 以下几种方法可使非特异性结合降到最低限度。 首先,如同其他亲和层析法一样,所用基质的量必须调整到刚好在其结合纯化制品中所有抗原的水平上,使纯化后的抗原溶液中非特异性蛋白的量尽可能降低。微珠的用量可通过预试确定,并可以测定不同体积的抗体-微珠基质捕获抗原的量。 第二种方法是降低层析柱的非特异性吸附量。许多吸附到柱基质上的蛋白质是部分或全部变性的蛋白。在制备抗原溶液时

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