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- 2026年01月03日
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1. 小鼠称重，按照50mg/kg腹腔注射麻药，待小鼠肌力下降、对外界刺激反应迟钝后进行后续实验。
2. 将小鼠仰卧位固定在鼠板上，脱毛膏脱掉颈部与左胸部分毛发，鹅颈灯下插气管插管，呼吸机频率控制在90bpm,潮气量在3-4X100 cc/min。
3. 消毒酒精消毒左胸，在第二第三根肋骨间横向剪开皮肤，挑起斜向的胸大肌，拉断内侧纵向的胸小肌，暴露胸腔。切开第二第三肋骨间的肌肉，挑起，放入肋骨撑开器，避免碰到肺，暴露心脏，明显看到胸腺、左心耳。如下图
4. 用尖镊子撕掉心脏包膜，左手固定心脏，暴露心耳，右手持持针器，用8-0的尼龙线在心耳下缘3-5mm LAD处进行结扎，观察左心室结扎处下面的颜色变化以及跳动情况。
5. 用5-0的缝合线缝合肋骨，确保肋骨完全合上，避免形成气胸引起术后死亡。
6. 用5-0的缝合线缝合肌肉和皮肤，完全闭合后用碘酊涂抹伤口。
7.观察小鼠状态，拔出呼吸导管，用镊子刺激小鼠手脚、尾部，刺激小鼠恢复呼吸，10-20s后无呼吸或者无规律呼吸呼吸，继续插上呼吸机，直到能恢复自主呼吸为止。
8. 心梗后一天进行心动超声检测心梗后心功能，保留射血分数在20-40%之间的小鼠。
实例：
我们提供动物模型构建、后续心动超声检测心功能以及后续心态学水平评价等服务，具体欢迎咨询。
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文献和实验-Ehmsen用实时PCR方法和大鼠梗死模型检查移植单核细胞和间充质干细胞的生存情况。接受移植者为雌性大鼠，供者为雄性大鼠。实时PCR检出基于Y染色体的识别。细胞注射入疤痕和心肌梗死的边缘区进行多种比较，包括细胞数（105，106和缺血损伤后的日数），结果反映注射后数小时内干细胞生存率高（35%），但6周后很快降低至极低（±1%）。单核细胞和中膜干细胞的资料相近似。细胞数增加并不改变生存组分，但增加（按逻辑）绝对数。随后较迟的注射，生存情况差。用胎盘-生成生长因子孵育细胞，防止凋亡，对生存率无大作
大鼠神经功能缺损的详细评分（Neurological Severi
)和记忆的保持(memory retention)。该模型含有一定的空间记忆成份，试验箱是一个长方形的封闭空间，高为60cm，箱内有一较小的平台9 cm X 9 cm, 高出底面约2 cm，动物只能不十分舒服地坚持在平台上，如跑下平台(铜棒，通电，30 V)即遭到电击。训练过程是这样的:首先把动物放在平台上，大鼠一般在平台上只能停留几分钟，就会跑下来，但由于底面的金属条是通电的，大鼠在寻找一段时间后，能够找回平台。这时第一次试验结束，24 h后，再次把大鼠放在平台上，这时底面的金属条并不通电，记录
大鼠神经功能缺损的详细评分（Neurological Severity Scores,NSS）标准
1．神经行为评分 在梗死后24 h,按照Masao Shmi izu-Sasamata的方法[3]对所有大鼠进行神经行为评分,评分标准包括:①自主活动的程度,②左前肢偏瘫,③提尾时左前肢伸不直,④抗侧推能力,⑤向左倾斜度,⑥向左环行度,⑦对触须的反应。以上指标无异常为0分,中等异常为1分,严重异常为2分,将各项评分相加,总分为0~14分。 2．动物行为学评定 ①0分:无神经损伤症状; ②1分:不能完全伸展对侧前爪;
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