Insulin/IGF-1抗体组

产品说明

胰岛素/IGF-1 信号转导通路小包装抗体套装（Signaling Pathway Antibody Sampler Kit）提供一种经济合算的方法来检测与胰岛素和/或 IGF-1 信号转导通路有关的特定组分。该试剂盒含有足量的一抗，每种抗体至少可进行两次蛋白质印迹实验。

特异性/灵敏度

胰岛素受体 β (4B8) 兔单克隆抗体可检测总胰岛素受体 β 的内源水平。它不会与 IGF-IR β 发生交叉反应。IGF-I 受体 β (D23H3) XP^® 兔单克隆抗体可检测 IGF-I 受体 β 总蛋白的内源水平。这种抗体不与胰岛素受体发生交叉反应。Phospho-IGF-I Receptor β (Tyr1131)/Insulin Receptor β (Tyr1146) Antibody 可检测内源水平的 Tyr1131 磷酸化 IGF-I 受体和 Tyr1146 磷酸化胰岛素受体。该抗体与激活的 PDGF、FGF 和 EGF 受体、ErbB2 和c-Met 发生交叉反应。Phospho-Akt (Ser473) (D9E) XP^®Rabbit mAb 检测仅在 Ser473 磷酸化后的内源水平的 Akt。Phospho-Akt (Thr308) (D25E6) XP^®Rabbit mAb 仅在 Thr308 磷酸化后可识别内源水平的 Akt1 蛋白。该抗体在 Thr309 磷酸化后也可识别内源水平的 Akt2 蛋白，或者当 Thr305 磷酸化后可识别内源水平的 Akt3 蛋白。Phospho-GSK-3β (Ser9) (D85E12) XP^®Rabbit mAb 仅在 Ser9 磷酸化后可检测内源水平的 GSK-3β。该抗体可与牛血清(包括 BSA) 的变性组分发生反应。Phospho-Tuberin/TSC2 (Ser939) Antibody 仅在马铃薯球蛋白在丝氨酸 939 位点被磷酸化时方可检测内源水平的马铃薯球蛋白。该抗体不会与在其他位点被磷酸化的马铃薯球蛋白发生交叉反应。FoxO1、FoxO3a、FoxO4 分别在 Thr24/Thr32/Thr28 位点磷酸化时，Phospho-FoxO1 (Thr24)/FoxO3a (Thr32)/Fox04 (Thr28) (4G6) Rabbit mAb 可检测 FoxO1、FoxO3a、FoxO4 的内源水平。Phospho-mTOR (Ser2448) (D9C2) XP^® Rabbit mAb 仅在 Ser2448 磷酸化后可检测内源水平的 mTOR 蛋白。

来源/纯化

使用与人胰岛素受体 β 中 Tyr999 周围的残基相对应的合成肽对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。使用与人 IGF-I 受体 β 蛋白中羧基末端周围的残基相对应的合成肽对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。使用与人 IGF-I Receptor β 残基相对应的合成磷酸肽，对动物进行免疫接种来产生多克隆抗体。抗体可经蛋白 A 和肽亲和色谱法进行纯化。使用与人 Akt 的 Ser473 周围残基相对应的合成磷酸肽，对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。使用与人 Akt1 蛋白的 Thr308 周围残基相对应的合成肽，对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。使用与人 GSK-3β 的 Ser9 周围残基相对应的合成磷酸肽，对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。使用与人马铃薯球蛋白中 Ser939 周围的残基相对应的合成磷酸肽对动物进行免疫接种来产生多克隆抗体。通过蛋白质 A 和肽亲和色谱纯化抗体。使用与人 Fox04 的 Thr28 周围残基相对应的合成磷酸肽，对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。使用与人 mTOR 蛋白的 Ser2448 周围残基相对应的合成肽，对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。

背景

胰岛素和 IGF-1 作用于两种紧密相关的酪氨酸激酶受体，从而启动信号转导活动级联。这些信号转导事件会激活能够调节细胞生长、存活和代谢的各种生物分子，包括激酶和转录因子。

I 型胰岛素样生长因子受体 (IGF-IR) 是一种跨膜受体酪氨酸激酶，其广泛表达于胎儿和产后组织内的许多细胞系和细胞类型中 (1-3)。激酶结构域中的三个酪氨酸残基 (Tyr1131，Tyr1135，Tyr1136) 是最早期的主要自磷酸化位点 (4)。这三种酪氨酸残基的磷酸化对于激酶激活十分重要 (5,6)。胰岛素受体 (IR) 与 IGF-I 受体在结构和功能方面显著相似，包括在激酶结构域激活环内存在相当的酪氨酸簇(Tyr1146/1150/1151)。IR 的酪氨酸自磷酸化是对胰岛素刺激产生的最早细胞应答之一 (7)。自磷酸化从 Tyr1146 和 Tyr1150 或 Tyr1151 位点开始磷酸化，同时完全的激酶激活需要三重酪氨酸磷酸化 (8)。

Akt（也称 PKB 或 Rac）在控制存活和凋亡中发挥关键作用 (9-11)。这种蛋白激酶由胰岛素和多种生长和存活因子激活，并在涉及 PI3 激酶的 wortmannin 敏感通路中发挥作用 (10,11)。通过磷脂结合过程并由 PDK1 在 Thr308 位点磷酸化激活环 (12) ，以及通过羧基末端内部 Ser473 处的磷酸化激活 Akt。曾经功能难以捉摸的 PDK2 可在 Ser473 处磷酸化 Akt ，它被鉴定为在含 rictor 和 Sin1 的雷帕霉素中的非敏感复合体中哺乳动物雷帕霉素靶标 (mTOR) (13,14)。

马铃薯球蛋白是 TSC2 抑癌基因的一种产物，也是细胞增殖和肿瘤发生的一个重要调节分子 (15)。PI3K 激活时，马铃薯球蛋白在 Ser939 和 Thr1462 位点被磷酸化，并且人 TSC 复合体是 PI3K/Akt 通路的一个直接生化靶标 (16)。这样的结果补充说明了许多果蝇遗传学研究，其中研究表明马铃薯球蛋白-错构瘤蛋白复合体可能与 PI3K/Akt 介导的胰岛素通路有关 (17-19)。

哺乳动物 rapamycin 靶标蛋白 (mTOR, FRAP, RAFT) 是一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶 (20-22)，可作为 ATP 和氨基酸感应蛋白来平衡营养可用性和细胞生长 (23,24)。当有足够的营养可用时，mTOR 响应磷脂酸介导的信号，将正向信号传送到 p70 S6 激酶，并参与 eIF4E 抑制因子 4E-BP1 的失活 (25)。这些活动导致特定 mRNA 亚群的翻译。mTOR 通过 PI3 激酶/Akt 信号转导通路在 Ser2448 位点被磷酸化，并在 Ser2481 位点发生自磷酸化 (26,27)。

叉头转录因子家族与横纹肌肉瘤和急性白血病的发生有关 (28-30)。这个家族中，三个成员（FoxO1、FoxO4、 FoxO3a）与线虫的同源基因 DAF-16 具有序列相似度，而 DAF-16 信号转导包括 IGFR1，PI3K 和 Akt 在内的信号通路 (31-33)。活化的 forkhead 成员作为抑癌基因，促进细胞周期阻滞和凋亡。Forkhead 转录因子通过 Akt 在 Thr24、Ser256 和 Ser319 位点的磷酸化灭活时，增殖增加，导致出核和转录因子活性受到抑制 (34)。

糖原合成酶激酶-3 (GSK-3) 最初被发现是一种在胰岛素刺激下调节糖原合成的酶 (35)。GSK-3 是 PI3K/Akt 细胞生存通路的重要下游组分，其活性可被 Akt 介导的 GSK-3α Ser21 和 GSK-3β Ser9 的磷酸化抑制 (36,37)。

1. Adams, T.E. et al. (2000) Cell Mol Life Sci 57, 1050-93.
2. Baserga, R. (2000) Oncogene 19, 5574-81.
3. Scheidegger, K.J. et al. (2000) J Biol Chem 275, 38921-8.
4. Hernández-Sánchez, C. et al. (1995) J Biol Chem 270, 29176-81.
5. Lopaczynski, W. et al. (2000) Biochem Biophys Res Commun 279, 955-60.
6. Baserga, R. (1999) Exp Cell Res 253, 1-6.
7. White, M.F. et al. (1985) J Biol Chem 260, 9470-8.
8. White, M.F. et al. (1988) J Biol Chem 263, 2969-80.
9. Franke, T.F. et al. (1997) Cell 88, 435-7.
10. Burgering, B.M. and Coffer, P.J. (1995) Nature 376, 599-602.
11. Franke, T.F. et al. (1995) Cell 81, 727-36.
12. Alessi, D.R. et al. (1996) EMBO J 15, 6541-51.
13. Sarbassov, D.D. et al. (2005) Science 307, 1098-101.
14. Jacinto, E. et al. (2006) Cell 127, 125-37.
15. Soucek, T. et al. (1998) Proc Natl Acad Sci U S A 95, 15653-8.
16. Manning, B.D. et al. (2002) Mol Cell 10, 151-62.
17. Gao, X. and Pan, D. (2001) Genes Dev 15, 1383-92.
18. Potter, C.J. et al. (2001) Cell 105, 357-68.
19. Tapon, N. et al. (2001) Cell 105, 345-55.
20. Sabers, C.J. et al. (1995) J Biol Chem 270, 815-22.
21. Brown, E.J. et al. (1994) Nature 369, 756-8.
22. Sabatini, D.M. et al. (1994) Cell 78, 35-43.
23. Gingras, A.C. et al. (2001) Genes Dev 15, 807-26.
24. Dennis, P.B. et al. (2001) Science 294, 1102-5.
25. Fang, Y. et al. (2001) Science 294, 1942-5.
26. Navé, B.T. et al. (1999) Biochem J 344 Pt 2, 427-31.
27. Peterson, R.T. et al. (2000) J Biol Chem 275, 7416-23.
28. Anderson, M.J. et al. (1998) Genomics 47, 187-99.
29. Galili, N. et al. (1993) Nat Genet 5, 230-5.
30. Borkhardt, A. et al. (1997) Oncogene 14, 195-202.
31. Nakae, J. et al. (1999) J Biol Chem 274, 15982-5.
32. Rena, G. et al. (1999) J Biol Chem 274, 17179-83.
33. Guo, S. et al. (1999) J Biol Chem 274, 17184-92.
34. Arden, K.C. (2004) Mol Cell 14, 416-8.
35. Welsh, G.I. et al. (1996) Trends Cell Biol 6, 274-9.
36. Srivastava, A.K. and Pandey, S.K. (1998) Mol Cell Biochem 182, 135-41.
37. Cross, D.A. et al. Nature 378, 785-9.