猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(CSFV)哪里卖

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

北京百奥莱博致力于最快速、最有效的检测产品，包括猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(CSFV)哪里卖在内的动物疫病PCR检测试剂盒产品是我公司倾力打造的优势产品，欢迎选购。

名称：猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(CSFV)哪里卖
规格：48次/盒|96次/盒
品牌：百奥莱博
等级：科研试剂
编号：SYA393
一、简介：
本试剂盒用一对猪瘟病毒特异性引物，结合一条特异性荧光探针，用一步法荧光RT-PCR技术对猪瘟病毒RNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。本试剂盒中猪瘟病毒的探针报告基团为FAM。

二、用途：
本试剂盒适用于猪病料、鼻咽拭子、血液等样本中的猪瘟病毒(CSFV)特异性检测。适用于猪瘟病毒(CSFV)感染的辅助诊断、监测及流行病学调查，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
猪瘟病毒荧光qRT-PCR反应液(CSFV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(PTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与RNA提取
6.1 样品的采集
按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-80℃，但不能超过6个月，标本运送应采用0℃冰壶。
6.1.1 血清：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入无菌的干燥玻璃管，室温(22-25℃)放置30-60min，血标本可自发完成凝集析出血清，或直接使用水平离心机，3000rpm离心5min，吸取上层血清，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.2 血浆：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管，立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，5-10min后即可分离出血浆，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.3 拭子、分泌物等样品：在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水，剧烈振荡30s。棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中，6000rpm离心20s，取上清备用。
6.1.4 病灶组织样品：称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮)，再加1mL生理盐水研磨至无块状物，然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液于1.5mL灭菌离心管中。

6.2 RNA提取
可按常规方法提取，也可采用商品化试剂盒提取病毒RNA。
6.2.1 取无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管，做好标识。
6.2.2 加入600μL裂解液，200μL样本，200μL*仿，混匀器上振荡5 s，4℃ 12000 rpm离心15 min。
6.2.3 吸取步骤6.2.2中的上清液转移至新的无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管中(避免吸出中间层)，加入400 μL 异丙醇，颠倒混匀。
6.2.4 4℃ 12000 rpm离心15 min，弃上清；加入600 μL 75%乙醇。
6.2.5 4℃ 12000 rpm离心10 min，弃上清。打开离心管管盖，室温干燥5 min-10 min。
6.2.6 加入10μL 无核酸酶水，溶解管底的RNA，5000 rpm离心5 s，-20℃保存。若长期保存需放置-80℃冰箱。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(CSFV-qRT-PCRMIX)、酶混合物(EnzymesMIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加15μL，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(CSFV-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qRT-PCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
(1) 阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
(2) 阳性对照(CSFV-PTC)：均产生扩增曲线。
(3) 以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1) 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明CSFV核酸阳性。
(2) Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明CSFV核酸阴性。
(3) 如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
(4) 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行CSFVqRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明CSFV核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项
(1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2) 所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含RNA酶。
(3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
(4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。


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·结核分枝杆菌单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA046
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·诺沃克病毒(GI和GII)双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA025
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对诺沃克病毒GI型特异性引物，一对诺沃克病毒GII型特异性引物，分别结合一条特异性荧光探针，用一步法双重荧光RT-PCR技术对诺沃克病毒GI型RNA、GII型RNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。本试剂盒中诺沃克病毒GI型的探针报告基团为FAM，诺沃克病毒GII型的探针报告基团为HEX/VIC/JOE。

二、用途：
本试剂盒适用于喉咽棉拭子、泄殖腔棉拭子、各种组织样品、尿囊液、细胞培养液、分泌物或粪便及病毒分离培养物等标本中的诺沃克病毒的特异性检测。适用于诺沃克病毒GI型感染的辅助诊断、监测及流行病学调查，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(40T/Kit)
组份 数量 规格
诺沃克荧光qRT-PCR反应液(Norovirus GI+GII-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(H5-PTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与RNA提取
6.1 样品的采集
按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-80℃，但不能超过6个月，标本运送应采用0℃冰壶。
6.1.1 血清：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入无菌的干燥玻璃管，室温(22-25℃)放置30-60min，血标本可自发完成凝集析出血清，或直接使用水平离心机，3000rpm离心5min，吸取上层血清，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.2 血浆：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管，立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，5-10min后即可分离出血浆，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.3 拭子、分泌物等样品：在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水，剧烈振荡30s。棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中，6000rpm离心20s，取上清备用。
6.1.4 病灶组织样品：称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮)，再加1mL生理盐水研磨至无块状物，然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液于1.5mL灭菌离心管中。
6.2 RNA提取
可按常规方法提取，也可采用商品化试剂盒提取病毒RNA。
6.2.1 取无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管，做好标识。
6.2.2 加入600 μL 裂解液，200 μL样本，200 μL *仿，混匀器上振荡5 s，4℃ 12000 rpm离心15 min。
6.2.3 吸取步骤6.2.2中的上清液转移至新的无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管中(避免吸出中间层)，加入400 μL 异丙醇，颠倒混匀。
6.2.4 4℃ 12000 rpm离心15 min，弃上清；加入600 μL 75％乙醇。
6.2.5 4℃ 12000 rpm离心10 min，弃上清。打开离心管管盖，室温干燥5 min-10 min。
6.2.6 加入10μL 无核酸酶水，溶解管底的RNA，5000 rpm离心5 s，-20℃保存。若长期保存需放置-80℃冰箱。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(NorovirusGI+GII-qRT-PCRMIX)、酶混合物(EnzymesMIX)，室温融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(Norovirus GI+GII-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qRT-PCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM和HEX/VIC/JOE。其中FAM基团检测GI，HEX/VIC/JOE基团检测GII。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
(1)阴性对照(NTC)：FAM和HEX/VIC/JOE通道全部阴性。
(2)阳性对照(NorovirusGI+GII-PTC)：FAM和HEX/VIC/JOE通道均有扩增。
(3)以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)FAM通道：Ct值≤35 Norovirus GI病毒核酸为阳性；Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Norovirus GI病毒核酸阴性。Ct值在35-40个循环之间，为灰区，需要进行重复试验。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Norovirus GI病毒核酸阳性；否则判为样本阴性。
(2)HEX/VIC/JOE通道：Ct值≤35 Norovirus GII病毒核酸为阳性；Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Norovirus GII病毒核酸阴性。Ct值在35-40个循环之间，为灰区，需要进行重复试验。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Norovirus GII病毒核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含RNA酶。
(3)PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(CSFV)哪里卖关键词：百奥莱博,猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(CSFV),SYA393

ARB12389 大鼠肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体3(TRAIL-R3)Elisa分析 Rat tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand 3,trail r3 ELISA KIT
F030638 FITC标记山羊人IgM抗体 Polyclonal Goat Anti-Human IgG FC*FITC
芴甲氧羰酰基-N-甲基-L-缬*酸 PTA 84000-11-3
J0304 兔抗马IgG(H+L)抗血清 1ml/10ml
ARB11054 人抵抗素(ResIstIn)血清中含量检测 Human resistin ELISA KIT
*水溶液  0.1%|0.3%|0.5%|1% 500ml
PY02-248  赖*酸铁琼脂  250克  
ARB12265 大鼠肌酸激酶同工酶MB(CK-MB)酶免分析 Rat creatine kinase mb isoenzyme,ck-mb ELISA KIT
2×Taq PCR Mastermix 
莫西沙星 Boc-Asn(Trt)-OH 151096-09-2
9012-76-4 壳聚糖
ARB13079 小鼠视黄醇结合蛋白4(RBP-4)酶联免疫定量检测 Mouse retinol-binding protein 4,rbp-4 ELISA KIT
BL0795 马IgG抗原(干粉)
ARB11667 人维生素C(VC)Elisa分析 Human vitamin c,vc ELISA KIT
氧化型辅酶Ⅱ Hb 53-59-8
3-*基异丁酸 Benzenesulfinic acid sodiu*(代"m") salt 144-90-1
Tris-硼*(代"酸")电泳粉剂(5×TBE)   1L
磺胺嘧啶* HFIP 547-32-0
聚*乙*(代"烯") Sodium 1-pentanesulfonate 9003-53-6
ARB12630 大鼠超氧化物歧化酶(SOD)Elisa定量检测 Rat super oxidase dimutase,sod ELISA KIT
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·猪瘟(CSFV)单重凝胶PCR检测试剂盒
编号：SYA548
等级：科研实验专用
规格：10次/盒|48次/盒

·猪流感病毒N2亚型(SIV-N2)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA457
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒

·肠产毒性大肠杆菌(ETEC)耐热肠毒素(ST-est)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA091
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·大肠杆菌O104/O157双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA106
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·轮状病毒A型单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA197
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·偏肺病毒(HMPV)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA185
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·玉米转基因GA21单重凝胶PCR检测试剂盒
编号：SYA282
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·禽腺病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA391
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对禽腺病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对禽腺病毒DNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染动物的病原学诊断。

二、用途：
该试剂盒适合于检测呼吸道分泌物棉拭子(感染I群禽腺病毒的鸡、火鸡、鹅、鹌鹑)、卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织、泄殖腔拭子(感染II、III群禽腺病毒的鸡、鸭)等样本中的禽腺病毒(AADV)，用于禽腺病毒(AADV)感染的辅助诊断及流行病学调查，其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
AADV反应液(AADV-qPCR MIX) 1管 720μL/管
核酸提取液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
AADV阳性对照(AADVPTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
病死禽取卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织；活鸡取呼吸道拭子或泄殖腔拭子，放于1ml 50％甘油生理盐水中。
6.2 样品前处理
组织样品：每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入1.5mL生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中；泄殖腔拭子直接取100μL提取。
6.3 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
6.31 纯培养物：取培养物50μL与50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min，取上清5μL进行PCR反应。
6.3.2 粪便样品：挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中，加入0.5mL生理盐水，振荡混匀，取50μL样品，加入50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
6.3.3 组织研磨液、拭子、血清、血浆及其他液体标本：取处理好的标本50μL，加入50μl DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(AADV-qPCR MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(AADV-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃ 延伸时收集荧光信号 。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX 参比荧光。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)： 不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照(AADV-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足 ，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线，表明AADV核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明AADV核酸阴性。
（3） 如果Ct值＞35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行AADV 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明AADV核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

北京百莱博科技有限公司专业生产动物疫病PCR检测试剂盒产品，欢迎来电咨询选购猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(CSFV)哪里卖。